ARTÍCULO ORIGINAL

 

Similaridad cariotípica entre diversas variedades de musa spp del Quindío-Colombia

 

Karyotypic similarity among different cultivars of musa spp from quindío-colombia

 

 

Sergio Esteban-Guapacha,I Dra.C. Marleny Salazar-Salazar,I M.Cs. Johanny Aguillón,II,III Dra.C. Patricia LandázuriII

ILicenciatura en Biología y Educación Ambiental. Universidad Del Quindío. Armenia-Quindío, Colombia.

IIFacultad de Ciencias de la Salud. Universidad Del Quindío. Armenia-Quindío, Colombia.

IIIEscuela Normal Superior del Quindío, Armenia - Quindío, Colombia.

 

 

RESUMEN

La identificación de genotipos de Musa spp ha tenido un alto grado de dificultad, debido al pequeño tamaño de los cromosomas y al reducido número de células que se obtienen en prometafase. La caracterización citogenética de los cultivares es una herramienta útil para su mejoramiento productivo o aumentar su resistencia a plagas, por esta razón se propuso la caracterización citogenética de nueve cultivares de Musa paradisíaca colectadas en Quindío-Colombia. Se comprobó la condición triploide de todos los cultivares, donde ‘Dominico’, ‘Dominico-Hartón’ y ‘Hartón’ fueron AAB; ‘Popocho’, ‘Guayabo’ y ‘Guineo ABB y los ‘Bananos’ fueron AAA; todos tenían 2n=3x=33 cromosomas. Se encontraron tres tamaños de cromosomas; cromosomas tipo A (1,951 - 2,790 µm); tipo B (1,134- 1,950 µm) y tipo C (0,307- 1,141 µm). Se encontró significante variabilidad en el número de cromosomas por tipo, cromosomas tipo A: 9 y solo en ‘Dominico-Hartón’; cromosomas tipo B: entre 0 y 18; C cromosomas: entre 6 y 33. También se encontró variabilidad en el tamaño cromosómico y el tamaño del genoma entre los cultivares siendo el más pequeño el ˈHartónˈ y el ‘Dominico-Hartón’ el de mayor tamaño cromosómico y de genoma. En conclusión todos los cultivares de Musa spp evaluados en el Quindío-Colombia, tienen tres tipos de cromosomas, difieren en el número de cromosomas en cada tipo y en la longitud del genoma, pero todos ellos son híbridos triploides (AAB, ABB, AAA). Este estudio contribuye al avance de la genética de Musa spp para su futuro mejoramiento.

Palabras clave: citogenética, número de cromosomas, plátano, tamaño del genoma.

ABSTRACT

Identification of Musa spp genotypes has had a high degree of difficulty by the small size of the chromosomes and by the small number of cells in prometaphase that are obtained. Cytogenetic characterization of the cultivars is a useful tool for its productive improvement or resistance increase to diseases and pests. For this reason cytogenetic characterization of 9 cultivars of Musa collected from Quindío- Colombia was proposed. Triploid condition was found in all cultivars, where ‘Dominico’, ‘Dominico-Hartón’ and ‘Hartón were AAB’; ‘Popocho’, ‘Guayabo’, and ‘Guineo’ ABB and ‘bananas’ were AAA; all had 2n = 3x = 33 chromosomes. Three type of chromosomes sizes were found; A (1.951 – 2.790 µm); B (1.134 – 1.950 µm) and C (0.307- 1.141 µm). A wide variability was found between chromosomes number by type: A chromosomes: 9 and only in ‘Dominico-Hartón’; B chromosomes: between 0 and 18; C chromosomes: between 6 and 33. Also were found significant differences in chromosome size and genome size among cultivars: ‘Hartón’ being the smallest, and ‘Dominico-Hartón’ with the largest chromosome and genome size. In conclusion all Musa spp, evaluated in Quindío, have three types of chromosomes, differ in chromosomes number in each type and genome length, but all they are triploid hybrids (AAB, ABB, AAA). This study contributes to the advance of the genetics of Musa sppfor future improvement.

Key words: cytogenetic, chromosome number, plantain, genome size, genetic diversity.

 

 

INTRODUCCIÓN

El género Musa pertenece a la familia Musaceae tiene más de 50 millones de años, está incluido en las dietas y es una fuente de energía para millones de personas, especialmente las que viven en los trópicos (1). Esta familia tiene tres géneros; Musa, Ensete y Musella. El género Musa es el más ampliamente distribuido y abarca cuatro cultivares dentro de él, Callimusa, Australimusa, Eumusa y Rhodochlamys, que difieren según el número de cromosomas y los patrones morfológicos (2,3). Durante la primera mitad del siglo XX, la investigación citogenética de los cultivares de Musa llevó a la determinación del número de cromosomas en las especies silvestres y cultivadas (4). En este sentido, se demostró que los primeros dos Callimusa y Australimusa tienen 10 cromosomas (2n = 2x = 20), que comprenden importantes especies ornamentales; mientras que Eumusa y Rhodochlamyes tienen 11 cromosomas (2n = 2x = 22), cultivares con frutos comestibles y mayor valor comercial (1,3).

Gran parte de los cultivares de Musa comestibles en el mundo son híbridos de linajes diploides de Musa acuminata Colla y Musa balbisiana Colla que contribuyeron a los genomas  A y B, respectivamente (5). La hibridación entre varias subespecies de Musa acuminata Colla y Musa balbisiana Colla resulta en cultivares triploides (2n = 3x = 33) (2,6-8).

La mayoría de los cultivares ´AAA´ son comestibles crudos cuando están maduros, mientras que los cultivares AAB (plátano) o ABB (bananos que requieren cocción) requieren alguna forma de cocción antes de ser consumidos (9).

El plátano es uno de los cultivos más importantes en el mundo, siendo un alimento básico en la dieta de millones de personas, principalmente en África y América, incluida Colombia, donde hay un consumo estimado de 155 kg por año per cápita. Este cultivo se ha convertido en un elemento de gran importancia económica para el país, por la generación de empleo y la perspectiva de la seguridad alimentaria. La producción de plátano en Colombia ha tenido grandes altibajos, en el 2013 el área de cultivos de plátano mostró una reducción del 6,1% en comparación con el año 2012, de manera similar, la producción se redujo en un 32 % en comparación con el mismo año. En Quindío, una región con grandes cultivos de plátano, entre 2000 y 2010, el rendimiento fue de 8,2-10 t ha-1 (9,5 t ha-1 promedio), similar a la producción de Venezuela para 2009 (8,6 t ha-1) (10); sin embargo, la producción en la región ahora se ha reducido a 7,5 t ha-1. Esta reducción en la producción puede deberse a una gran variedad de problemas fitosanitarios, manejo agrícola inadecuado, prácticas culturales inapropiadas, uso irracional de agroquímicos y uso de clones de baja producción (11), entre otras dificultades que afectan al Quindío y otras regiones dedicadas al cultivo de plátano. En este sentido, se ha demostrado que los genotipos de Musa balbisiana spp (genoma B), son para proporcionar resistencia a plagas, enfermedades y sequías (12). Mientras que los genotipos de Musa acuminata (genoma A) son ricos en compuestos fitoquímicos utilizados en muchos tratamientos de enfermedades en medicina tradicional (13). Por lo tanto, el uso de la diversidad genética de los cultivos podría ser una opción apropiada para mejorar la producción mediante el uso de genotipos más productivos (14).

A pesar de la importancia comercial y de seguridad alimentaria que los cultivos de plátano tienen para Quindío, el genoma de estas plantas es poco conocido especialmente en términos de carga cromosómica, por lo que se sabe, el cariotipo de cultivares de la región del Quindío no se ha descrito en cantidad y tamaño. Por esta razón, el objetivo de este estudio fue determinar las similitudes en los cariotipos de diferentes cultivares de Musa spp de la región del Quindío, con el propósito de contribuir a la caracterización, ampliar las posibilidades de intervención y el uso posterior de estos genotipos caracterizados en la evaluación de su capacidad productiva o resistencia a plagas en otras obras.

 

MATERIALES Y MÉTODOS

Material vegetal

Nueve muestras de Musa spp., de varios municipios de la región del Quindío fueron recolectados (Tabla I). Los cultivares se clasificaron según el conocimiento del agricultor (nomenclatura nativa) y se identificaron con un código de acceso único.


Observaciones citológicas

La preparación del material vegetal se llevó a cabo siguiendo la metodología descrita por Adeleke et al y D’Hont et al. (7,15), con algunas modificaciones menores, (el material fue meristemos radiculares en lugar de anteras y el coctel de enzimas fue diferente en porcentaje), brevemente: meristemos radiculares se obtuvieron de cuernos (brotes), se cortaron ápices radiculares de aproximadamente 1 cm de largo de estos meristemos, obtenidos de propágulos vegetativos previamente establecidos. Algunas muestras fueron tomadas directamente de la planta. El corte se hizo entre las 8:00 a.m. y las 12:00 p.m. Los ápices se colocaron en frascos de color ámbar con 2 ml de solución de 8-hidroxiquinolina al 0,02 % durante 24 horas a 8 °C. La fijación se realizó con etanol/ácido acético glacial 3:1 (v/v) durante 24 horas a 11-13 °C. Posteriormente, se almacenaron a 20 °C hasta su uso. Las muestras se dividieron en dos, una para tinción convencional y otra para tinción con DAPI.

Tinción convencional

El siguiente método se usó para el análisis cromosómico convencional: el tejido meristemático se hidrolizó en HCl 1N a 60 °C durante 15 minutos. A continuación, los ápices se lavaron para eliminar el exceso de HCl. La tinción se realizó incrustando los ápices en laca hematoxilina-crómica a 60 °C durante 3 horas, seguido de la trituración o aplastamiento. El tamaño y el número de cromosomas para cada muestra se estimaron en cinco a veinte prometafases para cada material utilizando negativos de fotografías ampliadas.

Tinción DAPI

Se obtuvieron vértices radiales y se fijaron como se describió anteriormente, se lavaron tres veces con agua destilada durante cinco minutos cada lavado. Posteriormente se digirieron en 10 ul de un 2 % de celulasa y un 20 % de coctel de pectinasa en cámara húmeda durante 2 horas a 37 °C. Se eliminó el exceso de coctel de enzima y se añadió una gota de ácido acético al 45 % para macerar y homogeneizar. Los meristemos fueron extraídos, aplastados y llevados al nitrógeno líquido. Después de la eliminación de los cubreobjetos, las láminas se secaron al aire durante dos horas a temperatura ambiente. Posteriormente las láminas se tiñeron con DAPI 10 ul 2,5 µg ml durante 30 minutos a temperatura ambiente en cámara oscura. Después de cinco lavados durante cinco minutos con tampón de fosfato (PBS-1X), se añadieron 10 ul de glicerol al 50 %, luego se realizó una presión suave de cubreobjetos sobre las láminas y los bordes del cubreobjetos se sellaron con esmalte claro.

Variables cromosómicas

Las siguientes variables se midieron en los cromosomas:

Análisis de los datos

Las imágenes digitales para la observación de cromosomas (40 y 100 x) con tinción convencional, se capturaron usando el microscopio Nikon Eclipse 80i con dispositivo fotográfico y con el programa NIS-Elements F2.30 en un sistema de análisis de imagen Leica QWIN®. Para la tinción DAPI, las láminas se observaron bajo un microscopio de fluorescencia EVOS FL.con un filtro de 340-380 nm, con 60 aumentos. El software ImajeJ (https://imagej.nih.gov/ij) se usó para la identificación y corte de cromosomas, y el software MicroMeasure versión 3.3; para medir la longitud de cada cromosoma. La imagen que ofrecía una mejor dispersión y condensación de cromosomas se usó para la identificación y descripción morfológica.

Los valores del tamaño de los cromosomas, el genoma haploide total y la longitud del genoma (tomados por triplicado) se expresan como valores medios con intervalos de confianza al 95 %. Para determinar las diferencias entre las longitudes promedio en los cultivares estudiados, se realizó una prueba ANOVA y Tukey. Se realizó un análisis de conglomerados K-means utilizando una prueba de Tukey, tomando la longitud haploide del genoma como variable; para todos los análisis se utilizó SPSS v 20 (IBM Corp. Released 2011, IBM SPSS Statistics para Windows, Versión 20.0. Armonk, NY: IBM Corp.).

 

RESULTADO y DISCUSIÓN

Del estudio citogenético realizado fue posible establecer y comparar el número, el tamaño y otras características cromosómicas de los cultivos de plátano de Quindío-Colombia.

Se encontraron células en varios estados mitóticos y se analizaron entre cinco y veinte células prometafase por cultivares.

Los resultados muestran que el número de cromosomas no fue constante en todas las preparaciones para los mismos cultivares. En el caso de ‘banano enano’ (muestra B-e-6, Tabla I), el recuento varió entre 26 y 44 (datos no mostrados). Sin embargo, el análisis cromosómico somático detallado de todos los genotipos estudiados utilizando tinción convencional o tinción DAPI mostró un promedio somático de 2n = 3x = 33 cromosomas en el 99 % de los cultivares, donde x = 11. Estos resultados confirman que estos cultivares son especies triploides con n = 11 (3,7,16).

Para estos cultivares, la tinción con DAPI (A) no fue superior a la tinción tradicional (B), como se muestra en la figura 1. La organización de los cromosomas en los tripletes se hizo difícil por el tamaño de los mismos (C). La Figura 1 muestra una de las mejores imágenes de los cromosomas de los nueve cultivares.


En décadas pasadas, se había determinado que el número básico de cromosomas en el género Musa era 11 (3,5) y se encontró que los tipos cultivados tienen tres niveles de ploidía natural: 2n = 2x = 22, 2n = 3x = 33, 2n = 4x = 44 cromosomas (7,17). De nuestros resultados, los cultivares regionales estudiados pertenecen al nivel de ploidía 2n = 3x = 33, e incluyen híbridos AAB, ABB, AAA. Este tipo de banano y plátano se ha descrito como híbridos triploides interespecíficos de Musa acuminata (genoma A) y Musa balbisiana (genoma B) (18). La poliploidía o la alteración del número básico de cromosomas se considera uno de los factores determinantes en la evolución de las especies, como lo demuestran Vichiato et al. para Dendrobium nobile (19), pero nuestros resultados muestran que las diferencias morfológicas observadas entre los cultivares estudiados no están relacionadas con cambios en el nivel de ploidía.

Una vez que se obtuvieron los cariotipos, se analizaron el tamaño de los cromosomas en función de su eje longitudinal (longitud absoluta en micrómetros) y su longitud relativa que representa la relación de cada cromosoma con respecto a la longitud total del genoma (n = 11). Los cromosomas se agruparon arbitrariamente por tamaño y se ordenaron por tripletes en función del tamaño absoluto (Figura 2). Bajo esta disposición, se encontraron tres tipos de cromosomas; cromosomas tipo A, tamaño medio-grande (1,951 – 2,790 μm); cromosomas tipo B, tamaño pequeño-mediano (1,134 – 1,950 μm); cromosomas tipo C, muy pequeños (0,307-1,11 μm).


Se encontraron diferencias en el tamaño cromosómico entre los cultivares, por lo que el cultivar Hartón tuvo el tamaño cromosómico promedio más bajo (0,595 μm) y el genoma (19,656 μm), mientras que el Dominico-Hartón tuvo el mayor tamaño cromosómico promedio (2,326 μm) y el genoma (57,946 μm ). Se encontró una amplia variabilidad entre los cromosomas, número por tipo, p. los cromosomas tipo A solo se encontraron en ‘Dominico-Hartón’ y ‘banano enano’: 9 y 3 cromosomas respectivamente; cromosomas tipo B entre 0 (Hartón) y 24 (Dominico-Hartón). Excepto Dominico-Hartón, todas las accesiones tenían cromosomas tipo C, entre 6 y 33. La longitud del genoma también tuvo una amplia variabilidad que va desde 19,273 μm (Hartón) a 57,946 μm. La Tabla II muestra los resultados.


Con el propósito de desarrollar estrategias eficientes para mejorar los cultivares de Musa, varios autores han intentado definir el número cromosómico, el tipo y el tamaño de las especies de Musa a través de estudios citogenéticos y moleculares (7,20,21); aunque actualmente se conoce el número de cromosomas (n=11) (16), estos cromosomas no se han numerado ni identificado completamente, en parte debido a dificultades técnicas tales como dificultad para obtener muestras celulares de buena calidad, tiempo y esfuerzo para encontrar los estados de mitótica correcta, rigidez de la pared celular, poca capacidad de tinción de los cromosomas en la etapa profase y pequeño tamaño de los cromosomas en estas especies (7).

Sin embargo, por primera vez, este estudio establece una diferencia en el tamaño del genoma entre diferentes cultivares de Musa de la región del Quindío. Esto permitió, aunque arbitrariamente, establecer la presencia de tres tipos de cromosomas por tamaño, la longitud total del genoma y la longitud haploide del genoma para el cultivar estudiado. Excepto por el cultivar llamado Dominico-Hartón, que tiene un cromosoma C de tipo cero, este tipo de cromosomas se encontraron en todos los cultivares, con una gran variabilidad en términos de número de cromosomas; por otro lado, la longitud del genoma varió considerablemente entre los cultivares. Un análisis detallado de los tipos de cromosomas revela el predominio de los cromosomas tipo C, entre 6 (banano enano) y 33 (Hartón); tales diferencias en el número de cromosomas en un subtipo se han descrito para otras plantas donde se mantiene el número diploide o haploide, pero existe una variabilidad en el tamaño de los cromosomas en cada subtipo (22,23).

La comparación de la longitud promedio de los cromosomas entre los cultivares mostró que estos se pueden ubicar en cinco grupos de acuerdo con la longitud promedio de los cromosomas: Grupo 1: Hartón; Grupo 2: ‘Guineo’; Grupo 3: Dominico, banano común, banano sapo, Guayabo y Popocho; Grupo 4:‘banano enano’ y Grupo 5: Dominico- Hartón, con diferencias significativas (p = 0,000).

Posteriormente, el análisis de conglomerados K-means permitió ubicar los cultivares en seis grupos: Grupo 1: Hartón; Grupo 2: ‘Guineo’; Grupo 3: ‘Dominico’, ‘banano común’, ‘banano sapo’ y ‘Guayabo’; Grupo 4: ‘Popocho’; Grupo 5: ‘banano enano’; Grupo 6: Dominico- Hartón; con diferencias significativas en la longitud haploide del genoma entre los grupos (p = 0,000).

El análisis estadístico, con Tukey Test, utilizando la uniformidad del genoma haploide como variable, ubica los cultivares en tres grupos: Grupo 1: ‘Guineo’, ‘banano común’, Hartón y ‘Popocho’; Grupo 2: ‘banano enano’, ‘Guayabo’, ‘Dominico’ y ‘banano sapo’; Grupo 3: ‘Dominico-Hartón, con diferencias significativas (p = 0,000) entre grupos.

El análisis de las relaciones genéticas entre las especies es importante para los programas de mejoramiento y para proporcionar información sobre la diversidad genética y la evolución de los cultivares, así como sobre el efecto de las condiciones ambientales sobre esta especie (9,24).

Aunque la caracterización con marcadores moleculares puede ser más precisa para el estudio de la variabilidad genética de los cultivares de plátano (25), este estudio proporciona un enfoque que consiste en agrupar cultivares regionales de plátano por tipo de cromosoma, tamaño y longitud del genoma.

Esto es importante para el futuro para llevar a cabo la evaluación de los genotipos en contra de la producción, resistencia a plagas o producción de metabolitos para uso en medicina alternativa (13,26).

Desafortunadamente, la calidad de la preparación y el tamaño del cromosoma en sí no permitieron diferenciar centrómeros o brazos en cromosomas a pesar de usar dos métodos de tinción diferentes, concluyendo que la tinción con DAPI no proporcionaba una resolución más alta a los preparados utilizados en este trabajo, pero sin ignorar las ventajas de este método de tinción para otras preparaciones. Esta incapacidad para caracterizar los cromosomas de manera concluyente ya ha sido descrita por Adeleke et al. (7), que propuso un nuevo método para caracterizarlos; sin embargo, aunque el procedimiento mejora sustancialmente la visibilidad de los cromosomas, las dificultades relacionadas con la calidad de los preparados no permitieron caracterizarlos completamente.

 

CONCLUSIÓN

Los cultivares estudiados de Musa spp, en la región de Quindío, tienen tres tipos de cromosomas según su tamaño, difieren en el número de cromosomas y la longitud del genoma para cada tipo, lo que permite agrupar cultivares, pero todos son híbridos triploides (2n = 3x = 33), (AAB, ABB, AAA), confirmando el uso de clones en esta región. Este estudio contribuye al avance de la genética de Musa spp para el futuro programa de mejora genética.

 

RECOMENDACIONES

Los resultados del estudio sirven para mejorar las técnicas citogenéticas y para aplicar a otros cultivares.

 

FONDOS

Este trabajo fue financiado por el Departamento Administrativo de Ciencia y Tecnología de Colombia (COLCIENCIAS) y el Banco Interamericano de Desarrollo (BID), Grant # 1113-545-31135, RC 551 de 2012; Gobierno de Quindío, y la Universidad del Quindío, proyecto interno # 582

 

AGRADECIMIENTOS

A los campesinos.

 

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Recibido: 19/01/2017
Aceptado: 20/06/2017

 

 

Sergio Esteban-Guapacha, Licenciatura en Biología y Educación Ambiental. Universidad Del Quindío. Armenia-Quindío, Colombia. Email: plandazu@uniquindio.edu.co