Cultivos Tropicales Vol. 43, No. 4, octubre-diciembre, 2022, ISSN: 1819-4087
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Artículo original

Respuesta a la inoculación de hongos micorrízicos arbusculares en diferentes líneas de trigo (Triticum durum L.) de primavera

 

iDYonaisy Mujica-Pérez*✉:ymujica@inca.edu.cu

iDAlianny Rodríguez-Valdés


Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA), carretera San José-Tapaste, km 3½, Gaveta Postal 1, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba. CP 32 700

 

*Autor para correspondencia: ymujica@inca.edu.cu

RESUMEN

Esta investigación se desarrolló con el objetivo de evaluar la respuesta a la inoculación de hongos micorrícicos arbusculares (HMA) en diferentes líneas de trigo de primavera, en condiciones controladas. Se utilizaron semillas de cinco líneas de trigo (Triticum durum L.) de primavera (AW-774, AC Carberry, HY-162, Major y AAC Scotia), con un 98 % de germinación, que se desinfectaron antes de la siembra. Se utilizó la cepa de HMA INCAM - 4: Glomus cubense (en formulación sólida y líquida), el inoculante comercial canadiense MYKE®PRO: Rhizoglomus irregulare y un control sin inoculación. Los tratamientos se distribuyeron con un arreglo de parcelas divididas bajo un diseño completamente aleatorizado, siendo la parcela principal la inoculación del HMA y como sub-parcelas las cinco líneas de trigo de primavera. Las evaluaciones se realizaron a los 120 días después de la siembra y se determinaron variables relacionadas con el funcionamiento micorrícico (frecuencia e intensidad de la colonización), con el crecimiento y desarrollo de las plantas y el rendimiento del cultivo. Los resultados mostraron un efecto positivo de la inoculación de Glomus cubense, con ambas formulaciones (sólido y líquido). También, se observó una respuesta diferencial de las líneas de trigo de primavera a la inoculación de HMA. Las líneas Major y AW-774, mostraron incrementos significativos en las variables estudiadas, comparadas con el resto.

Palabras clave: 
cereal, micorrizas, rendimiento

Received: 20/1/2021; Accepted: 14/10/2021

CONTENIDO

INTRODUCCIÓN

 

La agricultura actual requiere nuevos enfoques en materia de sostenibilidad y sustentabilidad, avalados por la investigación, la innovación y la tecnología, con vistas a garantizar la seguridad alimentaria (11. Okur N. A Review: Bio-Fertilizers- Power of Beneficial Microorganisms in Soils. Biomedical Journal of Scientific and Technical Research. 2018;4(4):4028-4029. DOI:10.26717/BJSTR.2018.04.001076.). En este contexto, los hongos micorrícicos arbusculares (HMA) representan un grupo de microorganismos edáficos que establecen simbiosis con numerosas especies vegetales de interés agrícola (22. Quinones-Aguilar EE, Hernández LV, López L, Rincon EG. Efectividad de hongos micorrízicos arbusculares nativos de rizósfera de Agave como promotores de crecimiento de papaya. Terra Latinoamericana. 2019;37(2):163-174. DOI: 10.28940/terra.v37i2.397.).

Dentro de los principales beneficios de esta simbiosis se destacan: los efectos directos en la nutrición mineral; especialmente en la absorción de macro y micronutrientes (33. Cavagnaro TR, Bender SF, Asghari HR, van der Heijden MGA. The Role of Arbuscular Mycorrhizas in Reducing Soil Nutrient Loss. Trends in Plant Science. 2015;20:283-290. DOI: 10.1016/j.tplants.2015.03.004 PMID: 25840500, 44. Zhang L, Xu M, Liu Y, Zhang F, Hodge A, Feng G. Carbon and phosphorus exchange may enable cooperation between an arbuscular mycorrhizal fungus and a phosphate-solubilizing bacterium. New Phytologist. 2016;210(3):1022-1032. DOI: 10.1111/nph.13838 ), la inducción de tolerancia frente a condiciones de estrés biótico (ej. patógenos) (55. Lenoir I, Fontaine J, Lounès-Hadj SA. Arbuscular mycorrhizal fungal responses to abiotic stresses: A review. Phytochemistry. 2016;23:4-15. DOI: 10.1016/j.phytochem.2016.01.002 ) y abiótico (ej. sequía y salinidad) (66. Augé RM, Toler HD, Saxton AM. Arbuscular mycorrhizal symbiosis alters stomatal conductance of host plants more under drought than under amply watered conditions: a meta-analysis. Mycorrhiza. 2015;25(1):13-24. DOI: 10.1007/s00572-014-0585-4 , 77. Sánchez-Romera B, Ruiz-Lozano JM, Zamarreño AM, García-Mina JM, Aroca R. Arbuscular mycorrhizal symbiosis and methyl jasmonate avoid the inhibition of root hydraulic conductivity caused by drought. Mycorrhiza. 2016;26(2):111-22. DOI: 10.1007/s00572-015-0650-7.), su participación en los procesos de fitorremediación (88. Kanwal S, Bano A, Malik RN. Role of arbuscular mycorrhizal fungi in phytoremediation of heavy metals and effects on growth and biochemical activities of wheat (Triticum aestivum L.) plants in Zn contaminated soils. African Journal of Biotechnology. 2016;15(20):872-883. DOI: 10.5897/AJB2016.15292.) y su contribución en la estabilidad de los agregados del suelo (99. Qiang-Sheng W, Srivastava AK, Ming-Qin C, Wang J. Mycorrhizal function on soil aggregate stability in root zone and root-free hyphae zone of trifoliate orange. Archives of Agronomy and Soil Science. 2015;61(6):813-825. DOI: 10.1080/03650340.2014.952226.).

Especial interés muestra la simbiosis que se establece entre los HMA y los cereales (1010. Bernaola L, Cange G, Way MO, Gore J, Hardke J, Stout M. Natural colonization of rice by arbuscular mycorrhizal fungi in different production areas. Rice Science. 2018;25(3):169-174. DOI: 10.1016/j.rsci.2018.02.006.,1111. Campo S, Martín-Cardoso H, Olivé M, Pla E, Catala-Forner M, Martínez-Eixarch M, San Segundo B. Efecto de la colonización de raíces por hongos micorrízicos arbusculares sobre el crecimiento, la productividad y la resistencia a la explosión en el arroz. Arroz. 2020;13(42). DOI: 10.1186/s12284-020-00402-7.), específicamente con el trigo (Triticum spp.), cultivo que representa el tercer cereal de mayor producción a escala mundial, por ser una importante fuente de proteína vegetal, cultivándose en diversas condiciones edafoclimáticas (1212. Lehnert H, Serfling A, Friedt W, Ordon F. Genome-Wide association studies reveal genomic regions associated with the response of wheat (Triticum aestivum L.) to mycorrhizae under drought stress conditions. Frontiers in Plant Science. 2018;9:1728. DOI: 10.3389/fpls.2018.01728.).

Los cultivares de trigo de primavera se diferencian de los cultivares de invierno por presentar un mayor contenido de proteína, dureza del grano y mejores propiedades fisicoquímicas de la masa, lo que favorece su proceso de molinado y le confiere a su harina una calidad superior (1313. Ahmed M, Fayyaz-ul-H. Response of Spring Wheat (Triticum aestivum L.) Quality Traits and Yield to Sowing Date. PLoS ONE. 2015;10(4):e0126097. DOI:org/10.1371/journal.pone.0126097 ). Algunos estudios han demostrado la efectividad de la simbiosis micorrízica en plantas de trigo, destacando, que una mejor nutrición en la planta incrementa su rendimiento; por lo que se plantea que los HMA pueden formar parte de las estrategias que conduzcan a una mejor seguridad alimentaria (1414. Ercoli L, Schüßler A, Arduini I, Pellegrino E. Strong increase of durum wheat iron and zinc content by field-inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi at different soil nitrogen availabilities. Plant and Soil. 2017:419(1):153-167. DOI:org/10.1007/s11104-017-3319-5 ).

Atendiendo estos criterios, el objetivo de este estudio fue evaluar la respuesta a la inoculación de hongos micorrízicos arbusculares en diferentes lineas de trigo de primavera, en condiciones controladas.

MATERIALES Y MÉTODOS

 

Características generales del experimento

 

El experimento se condujo en condiciones controladas de invernaderos del Instituto Agrícola de Ottawa, Canadá. Los tratamientos se distribuyeron con un arreglo de parcelas divididas bajo un diseño completamente aleatorizado, siendo la parcela principal la inoculación del HMA y como sub-parcelas las cinco líneas de trigo de primavera. Se empleó una mezcla de sustrato orgánico comercial: Lambert (musgo de turba de Sphagnum canadiense con pH = 7,1) y arena lavable, en proporción 1:1 (v/v), el cual se esterilizó en autoclave a 121 ºC durante dos horas, en ciclos de tres días continuos. Se sembraron seis semillas por maceta y a los siete días de la emergencia de las plantas, se realizó un raleo y se dejaron tres plantas por cada una.

Las plantas se desarrollaron en condiciones controladas con una temperatura promedio que osciló entre los 20 - 22 °C, un 80 % de humedad relativa y fotoperiodo ajustado a 16 horas luz / 8 horas oscuridad. Se aplicó urea a razón de 5 g por maceta, la cual se fraccionó en dos momentos del ciclo del cultivo: 3 g a los 15 días posteriores a la siembra y el resto 30 días después, de acuerdo a las normas establecidas para estas líneas de trigo en invernadero (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.). Se realizaron seis observaciones por tratamiento para un total de 120 macetas.

Descripción del material vegetal

 

El material vegetal consistió en semillas de cinco líneas de trigo (Triticum durum L.) de primavera (AW-774, AC Carberry, HY-162, Major y AAC Scotia), con un 98 % de germinación y certificadas por la oficina de registro de variedades de la Agencia de Inspección Alimentaria de Canadá (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.). Las semillas se sembraron en macetas de 5 kg de capacidad (0,22 m de altura y 0,24 m de diámetro superior).

Descripción del material fúngico

 

Se utilizó la cepa INCAM - 4: Glomus cubense (Y. Rodr. & Dalpé) (1616. Rodríguez Y, Dalpé Y, Séguin S, Fernández K, Fernández F, Rivera RA. Glomus cubense sp. nov., an arbuscular mycorrhizal fungus from Cuba. Mycotaxon. 2011;118:337-347. DOI: 10.5248/118.337.), en formulación sólida y líquida, procedente de la colección del Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA) de Cuba y registrada en el Herbario Nacional Micológico de Canadá, Ottawa, con código DAOM 241198, además del inoculante comercial canadiense MYKE®PRO (Rhizoglomus irregulare) (Blaszk., Wubet, Renker & Buscot) (1717. Schüßler A, Walker C. The Glomeromycota: A species list with new families and new genera. Create Space Independent Publishing Platform (Editor). 2011; 57 p.).

La aplicación de la formulación sólida (FS) de G. cubense, con una concentración promedio de 20 esporas por gramo de inoculante, consistió en 1 g por maceta, mientras que en el caso del producto comercial MYKE®PRO, con una pureza de 1 propágulo por gramo de inoculante, se inocularon 20 gramos por maceta. Ambas aplicaciones se realizaron en el momento de la siembra.

Para la aplicación del inoculante en formulación líquida (FL) se empleó una bomba hidráulica de inyección dosificadora para productos solubles en agua (ECOFERTIC), a una presión de 0,15 MPa y con una entrega de 5 mL por maceta en cada riego. La bomba se ajustó al sistema de riego por goteo con mangueras como líneas distribuidoras y goteros espaciados a 30 cm, con salida para cuatro macetas. Se realizó una única aplicación de esta formulación en el momento de la siembra, a la concentración de 20 esporas por mL, en un volumen final de 150 mL del producto.

En los tratamientos inoculados con la formulación sólida (FS) de G. cubense, el producto comercial MYKE®PRO y el control, el riego se realizó de forma manual, a la frecuencia y el volumen de agua empleada en el tratamiento inoculado mediante el riego por goteo. En el caso del tratamiento inoculado con la formulación líquida, el riego se realizó mediante el sistema automatizado. En ambos casos, el riego estuvo en correspondencia con la fenología de las líneas de trigo de primavera (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.).

Evaluaciones y Análisis estadístico

 

El experimento se extendió por 120 días después de la siembra (DDS) de las semillas y se evaluaron los siguientes indicadores:

  • Frecuencia e intensidad de colonización fúngica (%): se tomaron 250 mg de raíces secundarias, en cada muestra, las cuales se lavaron cuidadosamente, se secaron en una estufa a 70 ºC hasta masa constante, se tiñeron, clarificaron (1818. Rodríguez Y, Arias L, Medina A, Mujica Y, Medina LR, Fernández K, Mena A. Alternativa de la técnica de tinción para determinar la colonización micorrízica. Cultivos Tropicales. 2015;36(2):18-21.) y cuantificaron (1919. Trouvelot A, Kough J, Gianinazzi-Pearson V. Mesure du Taux de Mycorhization VA d'un Systeme Radiculaire. Recherche de Methodes d'Estimation ayantune Signification Fonctionnelle. Proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae: Physiological and Genetical Aspects of Mycorrhizae, Dijón. (Gianinazzi-Pearson, V.; Gianinazzi, S. Eds.). INRA, Paris. 1986; p. 217-222.).

  • Crecimiento y desarrollo de las plantas: Se determinó la longitud de la espiga (cm), la masa fresca y seca de la parte aérea y de la raíz (g) y el volumen de la raíz (m3). La masa fresca se determinó por pesada, en balanza técnica digital (Acom JW-1, nivel de precisión 0,1 g), mientras que la masa seca se determinó luego de secar las muestras a 70 ºC en la estufa, hasta masa constante. Las raíces se lavaron con abundante agua para eliminar las partículas de suelo. Posteriormente, se colocaron en un escáner y con el programa WinRhizo-Pro para Windows se determinó el volumen de raíz.

  • Rendimiento del cultivo: Se determinó el número de espigas por planta, masa promedio de los granos (g) y rendimiento del cultivo (g por m2).

Se verificó el cumplimiento de los supuestos de normalidad y homogeneidad de varianza. El procesamiento estadístico de los datos se realizó mediante un análisis multivariado de componentes principales y conglomerados jerárquico de ligamento completo. El agrupamiento obtenido a partir de estos análisis fue verificado usando un Análisis Factorial Discriminante. Se empleó el paquete estadístico IBM SPSS versión 19.0.

RESULTADOS

 

El análisis de Componentes Principales permitió identificar cuáles de las variables evaluadas estaban más relacionadas con las diferencias observadas, no solo en el crecimiento y desarrollo de las líneas de trigo, sino también en la respuesta de éstas a la inoculación con HMA. Como resultado del análisis se encontraron dos componentes que demostraron una varianza acumulada de 85,51 % (Tabla 1).

Tabla 1.  Representación de los valores propios y la varianza explicada para el método de Componentes principales
Componentes Valor propio Varianza explicada (%) Varianza acumulada (%)
1 7,75 70,45 70,45
2 1,66 15,06 85,51

En la Tabla 2 se presentan las variables que mostraron mayores coeficientes de correlación con ambas componentes.

Tabla 2.  Correlaciones entre las variables iniciales y las dos primeras componentes del análisis de componentes principales
Variables Componente 1 Componente 2
Masa Granos (g) 0,697 0,597
Longitud de la espiga (cm) 0,947 -0,090
Masa Fresca Aérea (g) 0,901 -0,355
Masa Seca Aérea (g) 0,904 -0,349
Masa Fresca Raíz (g) 0,949 0,057
Masa Seca Raíz (g) 0,913 -0,116
Frecuencia (%) 0,705 0,532
Intensidad (%) 0,393 0,819
Volumen Raíz (m3) 0,901 -0,046
Rendimiento (g por m2) 0,904 -0,099
Número Espigas 0,849 -0,246

En el caso de la componente 1, las variables de mayor incidencia fueron las relacionadas con el crecimiento de las plantas (longitud de la espiga, masa seca y fresca aérea y de la raíz y el volumen de raíz), el rendimiento del cultivo (número de espigas por planta y rendimiento) y la frecuencia de colonización; mientras que con la componente 2 se relacionó la intensidad de colonización de los HMA.

En la Figura 1 se muestra el agrupamiento de los tratamientos, tras la aplicación de ambos métodos multivariados (Componentes Principales y Conglomerado Jerárquico de Ligamento Completo).

c1: Control; c2: Glomus cubense (líquido); c3: Rhizoglomus irregulare; c4: Glomus cubense (sólido);V1: AW-774; V2: AAC Scotia; V3: HY-162; V4: AC Carberry; V5: Major. Matriz de las componentes principales 1 y 2 (CP1 y CP2). Agrupamiento: I (c4V5, c2V5); II (c2V1, c3V1, c3V5, c4V1); III (c2V3, c2V4, c4V3, c4V4); IV (c1V3, c1V4, c3V3, c3V4); V (c1V1, c1V2, c1V5, c2V2, c3V2, c4V2)
Figura 1.  Distribución de los tratamientos, según el análisis de Componentes Principales y de Conglomerado Jerárquico de Ligamento Completo, en los indicadores evaluados

El agrupamiento de los tratamientos fue el resultado del orden de su aparición a partir del análisis de Conglomerado Jerárquico de Ligamento Completo (Figura 2) realizado. Para la distribución de los tratamientos se tuvo en cuenta las variables de mayor correlación en la componente 1.

Línea vertical (color rojo) en el gráfico indica la distancia a la cual se estableció el agrupamiento. 1: C1V1, 2: C1V2, 3: C1V3, 4: C1V4, 5: C1V5, 6: C2V1, 7: C2V2, 8: C2V3, 9: C2V4, 10: C2V5, 11: C3V1, 12: C3V2, 13: C3V3, 14: C3V4, 15: C3V5, 16: C4V1, 17: C4V2, 18: C4V3, 19: C4V4, 20: C4V5. C1: Control; C2: Glomus cubense (líquido); C3: Rhizoglomus irregulare; C4: Glomus cubense (sólido); V1: AW-774; V2: AAC Scotia; V3: HY-162; V4: AC Carberry; V5: Major
Figura 2.  Agrupamiento de los tratamientos con la aplicación del método multivariado Conglomerado Jerárquico de Ligamento Completo

El grupo I estuvo representado por los tratamientos inoculados por G. cubense, en ambas formulaciones, en la línea de trigo Major. Cercano a él se ubicó el grupo II, identificado por las combinaciones de G. cubense (sólido y líquido) y R. irregulare en las líneas AW-774 y Major. El grupo III estuvo conformado por los tratamientos inoculados por G. cubense (sólido y líquido) y R. irregulare en las líneas de trigo HY-162 y AC Carberry. Un poco distante se ubicó el grupo IV, con los tratamientos control y el inoculado con R. irregulare en las mismas líneas del agrupamiento anterior. Finalmente, el grupo V estuvo integrado por el tratamiento control en las líneas AW-774, AAC Scotia y Major y la inoculación de G. cubense (sólido y líquido) y R. irregulare en la línea AAC Scotia.

El análisis multivariado permitió encontrar, de forma integral, un efecto positivo de la inoculación micorrízica en las diferentes líneas de trigo de primavera, a partir de incrementos significativos en los tratamientos inoculados con relación al control absoluto, destacándose los tratamientos con G. cubense, en ambas formulaciones, en la línea Major (grupo I) con los mejores comportamientos.

Con el análisis factorial discriminante se demostró un 100 % de coincidencia entre los grupos que se formaron. En la Tabla 3 se muestran las medias de las variables evaluadas por cada grupo conformado. Se observó que los valores superiores de los indicadores evaluados se ubicaron en el grupo I, con una tendencia a la disminución en los grupos IV y III, mientras que el grupo V estuvo representado por los tratamientos con valores inferiores.

Tabla 3.  Medias de las variables por cada grupo formado a partir del análisis factorial discriminante
Variables Evaluadas Medias por Grupo
I II III IV V
Masa Granos (g) 9,67 8,92 8,42 6,50 5,75
Longitud de la espiga (cm) 74,49 56,13 45,75 44,24 38,70
Masa Fresca Aérea (g) 1,60 1,31 1,22 1,08 0,89
Masa Seca Aérea (g) 1,58 1,30 1,06 1,20 0,86
Masa Fresca Raíz (g) 36,10 22,24 16,79 12,33 11,25
Masa Seca Raíz (g) 0,74 0,45 0,30 0,28 0,25
Frecuencia (%) 58,58 47,75 46,88 18,79 18,44
Intensidad (%) 2,46 1,57 3,20 0,30 0,29
Volumen Raíz (m3) 45,52 35,89 19,37 18,56 17,93
Rendimiento (g por m2) 381,05 364,67 269,17 246,03 190,07
Número Espigas 9,69 9,34 7,73 6,05 5,28

DISCUSIÓN

 

Aunque algunos estudios se refieren al carácter inespecífico de la simbiosis micorrízica por la diversidad de familias del reino vegetal, al ser susceptibles de ser colonizadas (2020. Bonfante P, Requena N. Dating in the dark: How roots respond to fungal signals to establish arbuscular mycorrhizal symbiosis. Current Opinion in Plant Biology. 2011;14(4):451-7. DOI: 10.1016/j.pbi.2011.03.014.), cada especie vegetal, e incluso cultivares o variedades dentro de una misma especie, tienen un grado de dependencia micorrízica diferente (2121. Lin G, McCormack ML, Guo D. Arbuscular mycorrhizal fungal effects on plant competition and community structure. Journal of Ecology, 2015; 103(5):1224-1232. DOI: 10.1111/1365-2745.12429.).

En apoyo a esta teoría, algunos autores evaluaron la factibilidad de un sistema de cultivo autotrófico en la producción de esporas y su capacidad para reproducir el ciclo de vida del hongo en condiciones in vitro en diferentes cultivares europeos y andinos de papa (Solanum tuberosum L.) y encontraron una respuesta diferencial entre ellos, lo cual pudo estar relacionado con caracteres fisiológicos y genéticos de cada cultivar que determinaron grados de dependencia diferentes (2222. Voets L, Dupré de Boulois H, Renard L, Strullu DG, Declerck S. Development of an autotrophic culture system for the in vitro mycorrhization of potato plantlets. FEMS Microbiology Letters. 2005;248(1):111-118. DOI: 10.1016/j.femsle.2005.05.025.).

De igual manera, en otras investigaciones se evaluó el efecto de la inoculación de R. irregulare en 5 cultivares de trigo y encontraron una dependencia micorrízica diferente en cada cultivar, con porcentajes de colonización variables que se correlacionaron con el resto de los indicadores evaluados (biomasa seca, masa de los granos y contenido de fósforo en el grano) (2323. Sawers RJH, Ramírez-Flores MR, Olalde-Portugal V, Paszkowski U. The Impact of Domestication and Crop Improvement on Arbuscular Mycorrhizal Symbiosis in Cereals: Insights from Genetics and Genomics. New Phytologist. 2018;220:1135-1140. DOI: 10.1111/nph.15152 PMID: 29658105.).

Los elementos descritos anteriormente, de conjunto con el comportamiento diferencial antes mencionado en las líneas de trigo evaluadas en este estudio, confirman que, a pesar que los HMA desarrollan asociaciones no específicas con sus plantas hospedantes, el grado de dependencia micorrízica suele variar para algunas combinaciones planta-hongo.

CONCLUSIONES

 

Los tratamientos inoculados con G. cubense, independientemente del tipo de formulación empleada, describieron un comportamiento superior al observado cuando se aplicó R. irregulare, en todas las variedades evaluadas. De igual forma, se observó que las líneas de trigo de primavera presentaron un grado de respuesta diferente a la inoculación, destacándose las líneas Major y AW-774 con valores superiores en cuanto al rendimiento, específicamente.

BIBLIOGRAFÍA

 

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Cultivos Tropicales Vol. 43, No. 4, octubre-diciembre, 2022, ISSN: 1819-4087
 
Original article

Response to arbuscular mycorrhizal fungi inoculation in different spring wheat (Triticum durum L.) lines

 

iDYonaisy Mujica-Pérez*✉:ymujica@inca.edu.cu

iDAlianny Rodríguez-Valdés


Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA), carretera San José-Tapaste, km 3½, Gaveta Postal 1, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba. CP 32 700

 

*Author for correspondence: ymujica@inca.edu.cu

ABSTRACT

With the aim to evaluate the response to arbuscular mycorrhizal fungi inoculation in different lines of spring wheat this research was developed under controlled conditions. Seeds from five spring wheat (Triticum durum L.) lines (AW-774, AC Carberry, HY-162, Major and AAC Scotia), with 98 % germination, were used and disinfected before sowing. The INCAM-4 strain: Glomus cubense (in solid and liquid formulation), the Canadian commercial inoculant MYKE®PRO (Rhizoglomus irregulare) and a control without inoculation were used. Treatments were distributed with an arrangement of divided plots under a completely randomized design, the main plot being the inoculation of AMF and the five lines of spring wheat as sub-plot. The evaluations were carried out at 120 days after sowing and variables related to mycorrhizal functioning (frequency and intensity of colonization), with the growth and development of the plants and the crop yield were determined. The results showed a positive effect of Glomus cubense inoculation in both formulations (solid and liquid). A differential response in AMF inoculation was observed among spring wheat lines. The Major and AW-774 lines showed significant increases in the variables studied compared to the rest.

Key words: 
cereal, mycorrhiza, yield

INTRODUCTION

 

Today's agriculture requires new approaches to sustainability and sustainability, supported by research, innovation and technology, in order to ensure food security (11. Okur N. A Review: Bio-Fertilizers- Power of Beneficial Microorganisms in Soils. Biomedical Journal of Scientific and Technical Research. 2018;4(4):4028-4029. DOI:10.26717/BJSTR.2018.04.001076.). In this context, arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) represent a group of soil microorganisms that establish symbiosis with numerous plant species of agricultural interest (22. Quinones-Aguilar EE, Hernández LV, López L, Rincon EG. Efectividad de hongos micorrízicos arbusculares nativos de rizósfera de Agave como promotores de crecimiento de papaya. Terra Latinoamericana. 2019;37(2):163-174. DOI: 10.28940/terra.v37i2.397.).

Among the main benefits of this symbiosis are direct effects on mineral nutrition, especially on the absorption of macro and micronutrients (33. Cavagnaro TR, Bender SF, Asghari HR, van der Heijden MGA. The Role of Arbuscular Mycorrhizas in Reducing Soil Nutrient Loss. Trends in Plant Science. 2015;20:283-290. DOI: 10.1016/j.tplants.2015.03.004 PMID: 25840500, 44. Zhang L, Xu M, Liu Y, Zhang F, Hodge A, Feng G. Carbon and phosphorus exchange may enable cooperation between an arbuscular mycorrhizal fungus and a phosphate-solubilizing bacterium. New Phytologist. 2016;210(3):1022-1032. DOI: 10.1111/nph.13838 ), the induction of tolerance to biotic (e.g. pathogens) (55. Lenoir I, Fontaine J, Lounès-Hadj SA. Arbuscular mycorrhizal fungal responses to abiotic stresses: A review. Phytochemistry. 2016;23:4-15. DOI: 10.1016/j.phytochem.2016.01.002 ) and abiotic (e.g. drought and salinity) stress conditions (66. Augé RM, Toler HD, Saxton AM. Arbuscular mycorrhizal symbiosis alters stomatal conductance of host plants more under drought than under amply watered conditions: a meta-analysis. Mycorrhiza. 2015;25(1):13-24. DOI: 10.1007/s00572-014-0585-4 , 77. Sánchez-Romera B, Ruiz-Lozano JM, Zamarreño AM, García-Mina JM, Aroca R. Arbuscular mycorrhizal symbiosis and methyl jasmonate avoid the inhibition of root hydraulic conductivity caused by drought. Mycorrhiza. 2016;26(2):111-22. DOI: 10.1007/s00572-015-0650-7.), their participation in phytoremediation processes (88. Kanwal S, Bano A, Malik RN. Role of arbuscular mycorrhizal fungi in phytoremediation of heavy metals and effects on growth and biochemical activities of wheat (Triticum aestivum L.) plants in Zn contaminated soils. African Journal of Biotechnology. 2016;15(20):872-883. DOI: 10.5897/AJB2016.15292.) and their contribution to the stability of soil aggregates (99. Qiang-Sheng W, Srivastava AK, Ming-Qin C, Wang J. Mycorrhizal function on soil aggregate stability in root zone and root-free hyphae zone of trifoliate orange. Archives of Agronomy and Soil Science. 2015;61(6):813-825. DOI: 10.1080/03650340.2014.952226.).

Of special interest is the symbiosis established between AMF and cereals (1010. Bernaola L, Cange G, Way MO, Gore J, Hardke J, Stout M. Natural colonization of rice by arbuscular mycorrhizal fungi in different production areas. Rice Science. 2018;25(3):169-174. DOI: 10.1016/j.rsci.2018.02.006., 1111. Campo S, Martín-Cardoso H, Olivé M, Pla E, Catala-Forner M, Martínez-Eixarch M, San Segundo B. Efecto de la colonización de raíces por hongos micorrízicos arbusculares sobre el crecimiento, la productividad y la resistencia a la explosión en el arroz. Arroz. 2020;13(42). DOI: 10.1186/s12284-020-00402-7.), specifically with wheat (Triticum spp.), a crop that represents the third cereal with the highest production worldwide, as it is an important source of vegetable protein, cultivated under diverse edaphoclimatic conditions (1212. Lehnert H, Serfling A, Friedt W, Ordon F. Genome-Wide association studies reveal genomic regions associated with the response of wheat (Triticum aestivum L.) to mycorrhizae under drought stress conditions. Frontiers in Plant Science. 2018;9:1728. DOI: 10.3389/fpls.2018.01728.).

Spring wheat cultivars differ from winter cultivars in having a higher protein content, grain hardness and better physicochemical properties of the mass, which favors its milling process and gives its flour a superior quality (1313. Ahmed M, Fayyaz-ul-H. Response of Spring Wheat (Triticum aestivum L.) Quality Traits and Yield to Sowing Date. PLoS ONE. 2015;10(4):e0126097. DOI:org/10.1371/journal.pone.0126097 ). Some studies have demonstrated the effectiveness of mycorrhizal symbiosis in wheat plants, highlighting that a better nutrition in the plant increases its yield; therefore, it is suggested that AMF can be part of the strategies that lead to a better food security (1414. Ercoli L, Schüßler A, Arduini I, Pellegrino E. Strong increase of durum wheat iron and zinc content by field-inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi at different soil nitrogen availabilities. Plant and Soil. 2017:419(1):153-167. DOI:org/10.1007/s11104-017-3319-5 ).

In view of these criteria, the objective of this study was to evaluate the response to the inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi in different spring wheat lines, under controlled conditions.

MATERIALS AND METHODS

 

General characteristics of the experiment

 

The experiment was conducted under controlled greenhouse conditions at the Ottawa Agricultural Institute, Canada. Treatments were distributed in a split-plot arrangement under a completely randomized design, with the main plot being the AMF inoculation and the five spring wheat lines as sub-plots. A mixture of commercial organic substrate: Lambert (Canadian Sphagnum peat moss with pH = 7.1) and washable sand, in a 1:1 (v/v) ratio, which was autoclaved at 121 ºC for two hours, in cycles of three continuous days, was used. Six seeds were sown per pot and seven days after plant emergence, the plants were thinned and three plants were left per pot.

Plants were grown under controlled conditions with an average temperature ranging between 20 - 22 °C, 80 % relative humidity and photoperiod adjusted to 16 hours light/8 hours dark. Urea was applied at a rate of 5 g per pot, which was divided in two moments of the crop cycle: 3 g 15 days after sowing and the rest 30 days later, according to the established norms for these wheat lines in greenhouses (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.). Six observations were made per treatment for a total of 120 pots.

Description of plant material

 

Plant material consisted of seeds from five spring wheat (Triticum durum L.) lines (AW-774, AC Carberry, HY-162, Major, and AAC Scotia), with 98 % germination and certified by the Canadian Food Inspection Agency variety registration office (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.). Seeds were sown in 5 kg pots (0.22 m high and 0.24 m top diameter).

Description of fungal material

 

INCAM - 4 strain: Glomus cubense (Y. Rodr. & Dalpé) (1616. Rodríguez Y, Dalpé Y, Séguin S, Fernández K, Fernández F, Rivera RA. Glomus cubense sp. nov., an arbuscular mycorrhizal fungus from Cuba. Mycotaxon. 2011;118:337-347. DOI: 10.5248/118.337.), in solid and liquid formulation, from the collection of the National Institute of Agricultural Sciences (INCA) of Cuba and registered in the National Mycological Herbarium of Canada, Ottawa, with code DAOM 241198, was used, in addition to the Canadian commercial inoculant MYKE®PRO (Rhizoglomus irregulare) (Blaszk., Wubet, Renker & Buscot) (1717. Schüßler A, Walker C. The Glomeromycota: A species list with new families and new genera. Create Space Independent Publishing Platform (Editor). 2011; 57 p.).

The application of the solid formulation (SF) of G. cubense, with an average concentration of 20 spores per gram of inoculant, consisted of 1 g per pot, while in the case of the commercial product MYKE®PRO, with a purity of 1 propagule per gram of inoculant, 20 grams per pot were inoculated. Both applications were made at the time of planting.

For the application of the inoculant in liquid formulation (LF), a hydraulic dosing injection pump for water-soluble products (ECOFERTIC) was used, at a pressure of 0.15 MPa and with a delivery of 5 mL per pot in each irrigation. The pump was adjusted to the drip irrigation system with hoses as distribution lines and drippers spaced at 30 cm, with output for four pots. A single application of this formulation was made at the time of planting, at a concentration of 20 spores per mL, in a final volume of 150 mL of the product.

In the treatments inoculated with the solid formulation (SF) of G. cubense, the commercial product MYKE®PRO and the control, irrigation was carried out manually, at the frequency and volume of water used in the inoculated treatment by drip irrigation. In the case of the treatment inoculated with the liquid formulation, irrigation was carried out using the automated system. In both cases, irrigation was in correspondence with the phenology of the spring wheat lines (1515. Agri-Food Canada. 2012. Crop profile for Spring Wheat in Canada. Catalogue No. A118-10/30-2012E. Agriculture and Agri-Food Canada (Editor), 2012; 67 p.).

Evaluations and statistical analysis

 

The experiment was extended for 120 days after sowing (DAS) of seeds and the following indicators were evaluated:

  • Frequency and intensity of fungal colonization (%): 250 mg of secondary roots were taken from each sample, which were carefully washed, dried in an oven at 70 ºC until constant mass, stained, clarified (1818. Rodríguez Y, Arias L, Medina A, Mujica Y, Medina LR, Fernández K, Mena A. Alternativa de la técnica de tinción para determinar la colonización micorrízica. Cultivos Tropicales. 2015;36(2):18-21.) and quantified (1919. Trouvelot A, Kough J, Gianinazzi-Pearson V. Mesure du Taux de Mycorhization VA d'un Systeme Radiculaire. Recherche de Methodes d'Estimation ayantune Signification Fonctionnelle. Proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae: Physiological and Genetical Aspects of Mycorrhizae, Dijón. (Gianinazzi-Pearson, V.; Gianinazzi, S. Eds.). INRA, Paris. 1986; p. 217-222.).

  • Plant growth and development: Spike length (cm), fresh and dry mass of aerial part and root (g) and root volume (m3) were determined. Fresh mass was determined by weighing on a digital technical balance (Acom JW-1, precision level 0.1 g), while dry mass was determined after drying the samples at 70 ºC in the oven to constant mass. Roots were washed with abundant water to remove soil particles. Subsequently, they were placed in a scanner and the root volume was determined with the WinRhizo-Pro program for Windows.

  • Crop yield: The number of ears per plant, average grain mass (g) and crop yield (g per m2) were determined.

The assumptions of normality and homogeneity of variance were verified. Statistical processing of the data was carried out by means of multivariate principal component analysis and hierarchical full linkage clustering. The clustering obtained from these analyses was verified using a Discriminant Factor Analysis. The IBM SPSS version 19.0 statistical package was used.

RESULTS

 

The Principal Component analysis allowed identifying which of the evaluated variables were most related to the observed differences, not only in the growth and development of the wheat lines, but also in their response to AMF inoculation. As a result of the analysis, two components were found that showed a cumulative variance of 85.51 % (Table 1).

Table 1.  Eigenvalue and explained variance plot for the Principal Component method
Components Eigenvalue Variance explained (%) Cumulative variance (%)
1 7.75 70.45 70.45
2 1.66 15.06 85.51

Table 2 shows the variables that showed the highest correlation coefficients with both components.

Table 2.  Correlations between the initial variables and the first two components of the principal component analysis
Variables Component 1 Component 2
Mass Grains (g) 0.697 0.597
Length of spike (cm) 0.947 -0.090
Fresh air mass (g) 0.901 -0.355
Aerial Dry Mass (g) 0.904 -0.349
Fresh Root Mass (g) 0.949 0.057
Root Dry Mass (g) 0.913 -0.116
Frequency (%) 0.705 0.532
Intensity (%) 0.393 0.819
Root Volume (m3) 0.901 -0.046
Yield (g per m2) 0.904 -0.099
Number of Spikes 0.849 -0.246

In the case of component 1, the variables with the highest incidence were those related to plant growth (spike length, aerial and root dry and fresh mass and root volume), crop yield (number of spikes per plant and yield) and colonization frequency; while with component 2, AMF colonization intensity was related.

Figure 1 shows the clustering of the treatments, after the application of both multivariate methods (Principal Components and Full Linkage Hierarchical Clustering).

c1: Control; c2: Glomus cubense (liquid); c3: Rhizoglomus irregulare; c4: Glomus cubense (solid); V1: AW-774; V2: AAC Scotia; V3: HY-162; V4: AC Carberry; V5: Major. Matrix of principal components 1 and 2 (PC1 and PC2). Clustering: I (c4V5, c2V5); II (c2V1, c3V1, c3V5, c4V1); III (c2V3, c2V4, c4V3, c4V4); IV (c1V3, c1V4, c3V3, c3V4); V (c1V1, c1V2, c1V5, c2V2, c3V2, c4V2)
Figure 1.  Distribution of treatments, according to the Principal Components and Full Linkage Hierarchical Cluster Analysis, in the indicators evaluated

Clustering of treatments was the result of the order of their appearance from the Complete Ligament Hierarchical Cluster Analysis (Figure 2) performed. For the distribution of the treatments, the variables with the highest correlation in component 1 were taken into account.

Vertical line (red color) in the graph indicates the distance at which the clustering was established. 1: C1V1, 2: C1V2, 3: C1V3, 4: C1V4, 5: C1V5, 6: C2V1, 7: C2V2, 8: C2V3, 9: C2V4, 10: C2V5, 11: C3V1, 12: C3V2, 13: C3V3, 14: C3V4, 15: C3V5, 16: C4V1, 17: C4V2, 18: C4V3, 19: C4V4, 20: C4V5. C1: Control; C2: Glomus cubense (liquid); C3: Rhizoglomus irregulare; C4: Glomus cubense (solid); V1: AW-774; V2: AAC Scotia; V3: HY-162; V4: AC Carberry; V5: Major
Figure 2.  Clustering of treatments with the application of the multivariate method Hierarchical Complete Ligament Clustering

Group I was represented by the treatments inoculated with G. cubense, in both formulations, in the Major wheat line. Close to it was group II, identified by the combinations of G. cubense (solid and liquid) and R. irregulare in the AW-774 and Major lines. Group III consisted of treatments inoculated with G. cubense (solid and liquid) and R. irregulare in wheat lines HY-162 and AC Carberry. A little distant was group IV, with the control treatments and the one inoculated with R. irregulare in the same lines of the previous grouping. Finally, group V consisted of the control treatment in lines AW-774, AAC Scotia and Major and the inoculation of G. cubense (solid and liquid) and R. irregulare in line AAC Scotia.

The multivariate analysis allowed finding, in an integral way, a positive effect of mycorrhizal inoculation in the different spring wheat lines, based on significant increases in the inoculated treatments in relation to the absolute control, highlighting the treatments with G. cubense, in both formulations, in the Major line (group I) with the best performance.

The discriminant factor analysis showed 100 % coincidence between the groups formed. Table 3 shows the means of the variables evaluated by each group formed. It was observed that the highest values of the indicators evaluated were located in-group I, with a tendency to decrease in groups IV and III, while group V was represented by the treatments with lower values.

Table 3.  Means of the variables for each group formed from the discriminant factor analysis
Variables Evaluated Averages per Group
I II III IV V
Mass Grains (g) 9.67 8.92 8.42 6.50 5.75
Length of spike (cm) 74.49 56.13 45.75 44.24 38.70
Fresh air mass (g) 1.60 1.31 1.22 1.08 0.89
Aerial Dry Mass (g) 1.58 1.30 1.06 1.20 0.86
Fresh Root Mass (g) 36.10 22.24 16.79 12.33 11.25
Root Dry Mass (g) 0.74 0.45 0.30 0.28 0.25
Frequency (%) 58.58 47.75 46.88 18.79 18.44
Intensity (%) 2.46 1.57 3.20 0.30 0.29
Root Volume (m3) 45.52 35.89 19.37 18.56 17.93
Yield (g per m2) 381.05 364.67 269.17 246.03 190.07
Number of Spikes 9.69 9.34 7.73 6.05 5.28

DISCUSSION

 

Although some studies refer to the nonspecific character of mycorrhizal symbiosis due to the diversity of families of the plant kingdom, as they are susceptible to colonization (2020. Bonfante P, Requena N. Dating in the dark: How roots respond to fungal signals to establish arbuscular mycorrhizal symbiosis. Current Opinion in Plant Biology. 2011;14(4):451-7. DOI: 10.1016/j.pbi.2011.03.014.), each plant species, and even cultivars or varieties within the same species, have a different degree of mycorrhizal dependence (2121. Lin G, McCormack ML, Guo D. Arbuscular mycorrhizal fungal effects on plant competition and community structure. Journal of Ecology, 2015; 103(5):1224-1232. DOI: 10.1111/1365-2745.12429.).

Some authors evaluated the feasibility of an autotrophic cultivation system in the production of spores and its capacity to reproduce the life cycle of the fungus under in vitro conditions in different European and Andean cultivars of potato (Solanum tuberosum L.) and found a differential response among them. It could be related to physiological and genetic characters of each cultivar that determined different degrees of dependence (2222. Voets L, Dupré de Boulois H, Renard L, Strullu DG, Declerck S. Development of an autotrophic culture system for the in vitro mycorrhization of potato plantlets. FEMS Microbiology Letters. 2005;248(1):111-118. DOI: 10.1016/j.femsle.2005.05.025.).

Similarly, in other investigations, the effect of R. irregulare inoculation was evaluated in 5 wheat cultivars and they found a different mycorrhizal dependence in each cultivar, with variable colonization percentages that were correlated with the rest of the indicators evaluated (dry biomass, grain mass and phosphorus content in the grain) (2323. Sawers RJH, Ramírez-Flores MR, Olalde-Portugal V, Paszkowski U. The Impact of Domestication and Crop Improvement on Arbuscular Mycorrhizal Symbiosis in Cereals: Insights from Genetics and Genomics. New Phytologist. 2018;220:1135-1140. DOI: 10.1111/nph.15152 PMID: 29658105.).

The elements described above, together with the aforementioned differential behavior of the wheat lines evaluated in this study, confirm that, although AMF develop non-specific associations with their host plants, the degree of mycorrhizal dependence tends to vary for some plant-fungus combinations.

CONCLUSIONS

 

The treatments inoculated with G. cubense, regardless of the type of formulation used, showed a superior performance to that observed when R. irregulare was applied, in all the varieties evaluated. Similarly, it was observed that the spring wheat lines showed a different degree of response to inoculation, with the Major and AW-774 lines standing out with higher yield values, specifically.