Cultivos Tropicales Vol. 46, No. 4, octubre-diciembre 2025, ISSN: 1819-4087
Código QR
Cu-ID: https://cu-id.com/2050/v46n4e09
Artículo original

Efecto de extractos de Solanum pimpinellifolium y Nicotiana tabacum L. frente al picudo negro (Cosmopolites sordidus)

 

iDJosé Humberto Vera Rodríguez1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.*✉:humbertorichi@hotmail.com

iDJosé Omar Salavarría Melo1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

iDHenry Paúl Villón Leoro1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

iDDaicy Veronica Rios Catota2Universidad Técnica Estatal de Quevedo. Avenida Carlos J. Arosemena 38, Quevedo, Ecuador, 120550.

iDEdison Macgyver Barragán Taco3Universidad Estatal Península de Santa Elena. Avenida principal La Libertad - Santa Elena, La Libertad, Ecuador, 240207.

iDIngrid Lourdes Sandoval Endara4Universidad de Guayaquil. Avenida Delta, Guayaquil 090510, Ecuador.

iDAngie Pamela Lopez Orellana5Universidad Estatal de Milagro. Cdla. Universitaria “Dr. Rómulo Minchala Murillo” - km. 11/2 vía Milagro - Virgen de Fátima; Milagro, Guayas, Ecuador. 091703.


1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

2Universidad Técnica Estatal de Quevedo. Avenida Carlos J. Arosemena 38, Quevedo, Ecuador, 120550.

3Universidad Estatal Península de Santa Elena. Avenida principal La Libertad - Santa Elena, La Libertad, Ecuador, 240207.

4Universidad de Guayaquil. Avenida Delta, Guayaquil 090510, Ecuador.

5Universidad Estatal de Milagro. Cdla. Universitaria “Dr. Rómulo Minchala Murillo” - km. 11/2 vía Milagro - Virgen de Fátima; Milagro, Guayas, Ecuador. 091703.

 

*Autor para correspondencia. humbertorichi@hotmail.com

Resumen

El objetivo de la investigación consistió en evaluar el efecto bioinsecticida de extractos de tomate de campo (Solanum pimpinellifolium) y tabaco (Nicotiana tabacum L.) contra el picudo negro (Cosmopolites sordidus). Los extractos se obtuvieron a partir de hojas secas, se molinaron y extrajeron compuestos bioactivos con etanol. Se identificaron metabolitos secundarios (triterpenos, alcaloides, flavonoides, fenoles, saponinas y azúcares reductores). Los insectos fueron capturados con trampas de pseudo tallo de plátano Musa paradisiaca L. cebadas con placenta de cacao. Se establecieron 7 tratamientos con 10 repeticiones, cada extracto se expuso a concentración de 20, 60, 100 % y un control. Se evaluó la mortalidad hasta los 12 días. El diseño establecido fue completamente aleatorizado, los datos se analizaron con ANOVA y Tukey (p<0.05). La caracterización morfológica del picudo negro mostró un cuerpo alargado de 10-14 mm, coloración oscura, pico prominente, antenas acodadas y élitros fusionados con estrías. Los extractos de ambas plantas indujeron mortalidad en C. sordidus, incrementándose con la concentración y el tiempo, N. tabacum L. resultó ser significativamente más efectivo que S. pimpinellifolium. En conclusión, el tamizaje fitoquímico reveló la presencia de compuestos bioactivos con efecto insecticida similares en tomate y tabaco. La identificación morfológica confirma la especie C. sordidus. El extracto de tabaco fue más efectivo para el picudo negro, con mortalidad dependiente de concentración y tiempo, demostrando mayor efecto insecticida que el tomate.

Palabras clave: 
Banano, bioplaguicida, insecto, metabolitos secundarios, musáceas, plátano

Recibido: 25/7/2025; Aceptado: 03/9/2025

Conflicto de intereses: Los autores declaran no tener conflicto de intereses.

Contribución de los autores: Mg. José Humberto Vera-Rodríguez: Ejecutó el plan experimental y escritura del documento, desarrollo de la investigación. MSc. José Omar Salavarría-Melo: diseñó el experimento y trabajó en la revisión del documento inicial. MSc. Henry Paúl Villón-Leoro: participó la supervisión de las evaluaciones realizadas. MSc. Daicy Veronica Rios-Catota participó en la conceptualización. MSc. Edison Macgyver Barragán-Taco: escritura del borrador inicial. MSc. Ingrid Lourdes Sandoval-Endara: Trabajó en la revisión del documento final y curación de datos. Ing. Angie Pamela Lopez-Orellana: Trabajó en la revisión del documento final.

CONTENIDO

Introducción

 

El picudo negro (Cosmopolites sordidus) es una especie de coleóptero curculionoideo de la familia Curculionidae, es uno de los principales enemigos de los cultivos de plátano y banano, causando pérdidas significativas en la producción agrícola a nivel mundial (11. Chiriguaya FDCU, Solís LKM, Peralta ERM, Pérez JDL, Guzmán ALS. Control de picudo negro en el cultivo de plátano (Musa paradisiaca). Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):501-13. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.209 ). Su capacidad de adaptación y la resistencia que ha desarrollado frente a pesticidas químicos han llevado a la búsqueda de métodos alternativos de control que sean más sostenibles y menos perjudiciales para el medio ambiente (22. Manu N, Schilling MW, Phillips TW. Natural and synthetic repellents for pest management of the storage mite Tyrophagus putrescentiae (Schrank)(Sarcoptiformes: Acaridae). Insects [Internet]. 2021;12(8):711. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12080711 ). En este contexto, los extractos vegetales como el de tomate de campo (Solanum pimpinellifolium) planta herbácea perteneciente a la familia de las solanáceas y tabaco (Nicotiana tabacum L.) emergen como opciones prometedoras en el manejo de este organismo nocivo.

El tomate de campo, una planta nativa de América, ha sido utilizado sus frutos tradicionalmente como fuente de alimento (33. Orantes-García C, Moreno-Moreno RA, Caballero-Roque A, Farrera-Sarmiento O. Plantas utilizadas en la medicina tradicional de comunidades campesinas e indígenas de la Selva Zoque, Chiapas, México. Boletín Latinoam y del Caribe plantas Med y aromáticas [Internet]. 2018;17(5):503-21. Available from: https://www.blacpma.ms-editions.cl/index.php/blacpma/article/view/134 ). Recientemente, se ha investigado su potencial como insecticida natural, gracias a la presencia de compuestos bioactivos que pueden afectar la fisiología y comportamiento de diversos insectos plaga (44. García-Sánchez AN, Chávez EC, Beache MB, Fuentes YMO, Ortiz JCD. Efecto de antibiosis, antixenosis y la variación natural de tricomas de especies silvestres y comerciales en tomate sobre el desarrollo de Bactericera cockerelli. Sci Agropecu [Internet]. 2023;14(4):501-9. Available from: http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2023.041 ). El interés en su uso como bioinsecticida se basa en la necesidad de encontrar alternativas viables que minimicen el impacto ambiental y protejan la salud humana (55. Lara YDM, Morales PA, Garzón JS, Olaya JFP. Componentes bioactivos del tomate y su posible poder antimicrobiano: estudio in vitro. Rev Cuba Med Nat y Tradic [Internet]. 2020;3. Available from: http://www.revmnt.sld.cu/index.php/rmnt/article/view/124 ).

Por otro lado, el tabaco ha sido reconocido por sus propiedades insecticidas desde la antigüedad, la nicotina y otros alcaloides presentes en las hojas de tabaco son conocidos por su eficacia en el control de diversas plagas (66. Su T. Resistance and resistance management of biorational larvicides for mosquito control. J Florida Mosq Control Assoc [Internet]. 2022;69(1). Available from: https://doi.org/10.32473/jfmca.v69i1.130641 ). Sin embargo, el uso de tabaco en la agricultura debe ser manejado con cuidado debido a su toxicidad y a la posibilidad de afectar a organismos no objetivo (77. Villalta II. Toxicidad vegetal. La Univ [Internet]. 2015;(25). Available from: https://revistas.ues.edu.sv/index.php/launiversidad/article/view/799 ). La investigación sobre su aplicación como bioinsecticida busca maximizar sus beneficios mientras se minimizan los riesgos asociados.

El enfoque en el uso de extractos de plantas para el control biológico de insectos plaga se alinea con las tendencias actuales hacia la agricultura sostenible, los extractos de tomate de campo y tabaco no solo representan opciones efectivas, sino que también pueden formar parte de un manejo integrado de plagas que promueva la biodiversidad y la salud del suelo (88. Romero R, Morales P, Pino O, Cermeli M, González E. Actividad insecticida de seis extractos etanólicos de plantas sobre mosca blanca. Rev Protección Veg [Internet]. 2015;30:23-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S1010-27522015000400005&script=sci_arttext&tlng=en ). La evaluación del efecto bioinsecticida de estos extractos frente al picudo negro implica un análisis detallado de su eficacia, así como de las condiciones que pueden influir en su rendimiento (99. Altieri MA, Nicholls CI, Dinelli G, Negri L. Towards an agroecological approach to crop health: reducing pest incidence through synergies between plant diversity and soil microbial ecology. npj Sustain Agric [Internet]. 2024;2(1):6. Available from: https://doi.org/10.1038/s44264-024-00016-2 ). Factores como la concentración del extracto, la forma de aplicación y las condiciones ambientales son cruciales para determinar su efectividad. Estos estudios son fundamentales para establecer protocolos de aplicación que garanticen un control efectivo de la plaga sin comprometer la seguridad de los ecosistemas circundantes (1010. Tavares WR, Barreto M do C, Seca AML. Aqueous and ethanolic plant extracts as bio-insecticides-Establishing a bridge between raw scientific data and practical reality. Plants [Internet]. 2021;10(5):920. Available from: https://doi.org/10.3390/plants10050920 ).

El conocimiento tradicional sobre el uso de plantas en la agricultura puede ofrecer valiosas perspectivas y prácticas que complementen las investigaciones científicas (1111. Burgo Bencomo OB. El conocimiento tradicional y la etnobotánica en la gestión de la agricultura familiar. Rev Univ y Soc [Internet]. 2021;13(4):431-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S2218-36202021000400431&script=sci_arttext ). La colaboración entre agricultores, investigadores y comunidades puede facilitar la implementación de soluciones basadas en recursos locales y promover la resiliencia en la producción agrícola (1212. Acosta Muñoz LE, Zoria Java J. Conocimientos tradicionales Ticuna en la agricultura de chagra y los mecanismos innovadores para su protección. Bol do Mus Para Emílio Goeldi Ciências Humanas [Internet]. 2012;7:417-33. Available from: https://doi.org/10.1590/S1981-81222012000200007 ). Esta interacción podría resultar en el desarrollo de estrategias innovadoras que no solo controlen el picudo negro, sino que también fortalezcan la sostenibilidad agrícola a largo plazo.

Finalmente, el objetivo de esta investigación es evaluar el efecto bioinsecticida de los extractos de tomate de campo y tabaco frente al picudo negro (C. sordidus). Se espera que los resultados contribuyan a una mejor comprensión del potencial como herramientas en el manejo de plagas, así como a la promoción de prácticas agrícolas más sostenibles y respetuosas con el medio ambiente.

Materiales y Métodos

 

Sitio de estudio

 

El trabajo experimental se llevó a cabo en el laboratorio de entomología de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Estatal Península de Santa Elena (UPSE), Ecuador, mientras que la colecta del insecto picudo negro (C. sordidus) se realizó en una plantación de plátano perteneciente a la finca Santa Trinidad de la localidad Juan Montalvo.

Preparación de los extractos

 

Recolección y secado del material vegetal

 

Una vez recolectadas las hojas de tomate (S. pimpinellifolium) y tabaco (N. tabacum L.) se lavaron con agua destilada para eliminar cualquier residuo superficial. Posteriormente, se secaron a temperatura ambiente y bajo oscuridad con suficiente ventilación durante 72 horas. Luego de este tiempo se introdujeron en desecador de alimentos marca RONCO, Modelo FD-6000 a 45 °C durante 24 horas para acelerar el proceso.

Molinado del material vegetal seco

 

Una vez secas las muestras vegetales fueron procesadas utilizando un molino de laboratorio marca FOSS, modelo CT-293, hasta obtener un polvo fino.

Extracción de los compuestos bioactivos

 

De cada muestra se pesaron 20 gramos y se colocaron en un matraz Erlenmeyer, con el solvente de extracción (etanol 80 %) en proporción de solvente a material vegetal 1:10 (p/v), con la finalidad de extraer una amplia gama de compuestos polares y semipolares. La mezcla se mantuvo en constante agitación en un agitador orbital-incubadora marca VWR modelo 5000-I, para aumentar la eficiencia de la extracción durante 48 horas a 25 ºC.

Filtración del extracto

 

Al finalizar el tiempo de la extracción, se procedió a separar el extracto líquido del residuo sólido mediante filtración, con la ayuda de un papel filtro Whatman No. 1 y un embudo de decantación. El filtrado líquido fue conservado en viales oscuros y herméticos a una temperatura entre 4-8 °C para prevenir la degradación de los posibles compuestos bioactivos presentes.

Determinación de compuestos bioactivos

 

En la determinación de triterpenos o esteroles se utilizó el ensayo de Liebermann-Burchard, para ello se empleó una gota de ácido sulfúrico en 1 mL de anhídrido acético frío, se añadió a 10 mg del residuo desecado del extracto vegetal disuelto en cloroformo y mediante la observación de cambios de coloración, en un intervalo de 60 minutos, se determinó la presencia o ausencia de estos compuestos.

Para confirmar la presencia de alcaloides se efectuó los ensayos de Mayer y Wagner, se empleó 3 gotas de sus respectivos reactivos por cada 1 mL de extracto, la formación de un precipitado blanco (Mayer) y rojo pardo (Wagner) es un indicativo de la presencia de este compuesto bioactivo.

La presencia de flavonoides se confirmó mediante la prueba de Shinoda, añadiendo limadura de magnesio y 3 gotas de ácido clorhídrico concentrado a 1 mL de extracto, la intensificación de un color naranja con burbujeo indica un resultado positivo.

La determinación de fenoles se confirma con la adición de 2 gotas de cloruro férrico al extracto, si se observa un pigmento verde oscuro intenso indica la presencia de este metabolito.

La presencia de saponinas en las muestras se confirmó con la agitación vigorosa del extracto durante 30 segundos, con la formación de una espuma estable por 3 minutos. Mientras que la presencia de azúcares reductores fue confirmada al calentamiento de 0.5 mL de extracto con 1 mL de solución A y 1 mL de solución B del reactivo de Fehling en baño maría por la formación de un precipitado rojo oscuro cuproso.

Colecta del picudo negro

 

Se utilizaron trampas con pseudotallos cortados en forma de “V” ubicados sobre el suelo. Para aumentar su efectividad se combinó en la parte central con placenta de cacao CCN- 51 como atrayente, creando un espacio para que los insectos pudieran ingresar fácilmente. Una vez obtenida la muestra de insectos de picudo negro fue trasladada hasta el laboratorio para la identificación taxonómica y clasificación de la etapa de vida, con la ayuda de un estereomicroscopio trinocular marca Better Scientific Q170-T.

Desarrollo del experimento

 

La distribución de las unidades experimentales se realizó en recipientes plásticos individuales (volumen 500 mL), con ventilación mediante 10 perforaciones de 2 mm de diámetro para asegurar un adecuado intercambio de aire. Cada recipiente constituyó una unidad experimental y se asignaron aleatoriamente 3 insectos adultos (C. sordidus) a cada unidad. Como fuente de alimento y sustrato para la inoculación de los tratamientos, se introdujeron fragmentos de tallo de M. paradisiaca L. en cuadrados de 5 cm2 y ≈ 10 g de peso fresco, los cuales fueron asignados de la siguiente manera: T1: extracto S. pimpinellifolium 20 %; T2: extracto S. pimpinellifolium 60 %; T3: extracto S. pimpinellifolium 100 %; T4: extracto N. tabacum L. 20 %; T5: extracto N. tabacum L. 60 %; T6: extracto N. tabacum L. 100 % T7: control. Como indicador se evaluó el porcentaje de mortalidad de los insectos a los 4, 8 y 12 días.

El estudio evaluó tres concentraciones diferentes (20, 60 y 100 %) de cada extracto a lo largo de un periodo de 12 días, con mediciones de la mortalidad registradas a los 4, 8 y 12 días.

El experimento se estableció bajo un diseño completamente aleatorizado (DCA), con 7 tratamientos y 10 repeticiones. Los datos fueron analizados mediante un análisis de varianza (ANOVA) de clasificación simple y en los casos donde se presentó diferencias significativas, se efectuó la comparación de medias según análisis de Tukey (DSH) con (p<0.05), con el software estadístico InfoStaf versión 2020.

Resultados

 

Screening fitoquímico. La Tabla 1, presenta los resultados del tamizaje fitoquímico de S. pimpinellifolium (Tomate) y N. tabacum L. (Tabaco). Este análisis es de carácter cualitativo, en el mismo se indica la presencia (+) de compuestos químicos (triterpenos, alcaloides, flavonoides, fenoles, azúcares reductores y taninos) en los extractos de plantas.

Tabla 1.  Resultado del tamizaje fitoquímico de la planta de tomate y tabaco
Compuesto Método de referencia Tomate Tabaco
Triterpenos Lieberrmann-Burchard + +
Alcaloides Mayer Reactive + +
Wagner Reactive + +
Flavonoides Shinoda + +
Fenoles Ferric chloride + +
Azúcares reductores Fehling + +
Taninos Foam + +
Saponinas Foam + +

(+) Positivo

Caracterización taxonómica de la especie de picudo negro capturado

 

En la Figura 1, se muestra el picudo negro del plátano (C. sordidus), mediante la observación con un estereomicroscopio, su caracterización revela insectos en etapa adulta de tamaños moderados entre los 10 y 14 mm de longitud, con un cuerpo de forma alargada y cilíndrica. Su coloración generalmente varía de negro a marrón oscuro, presentando una superficie del exoesqueleto dura y brillante. Una característica distintiva de este insecto, como miembro de la familia Curculionidae, es la presencia de un pico prominente y alargado que se proyecta desde su cabeza. Las antenas se insertan lateralmente en el rostro y presentan una estructura acodada con una maza en su extremo. Los ojos, de tipo compuesto, son pequeños y se encuentran ubicados a los lados de la cabeza. En el extremo del rostro se aprecian las mandíbulas, estructuras fuertes y esclerotizadas adaptadas para la masticación y la perforación del tejido vegetal.

El tórax se divide en segmentos, siendo el protórax la porción que porta el primer par de patas. Los élitros, que son las alas anteriores modificadas y endurecidas, cubren el abdomen y el segundo par de alas membranosas utilizadas para el vuelo. En C. sordidus, los élitros se encuentran fusionados y exhiben estrías longitudinales bien definidas, que son surcos o líneas paralelas a lo largo de su superficie. La observación del número y las características de estas estrías, así como la ausencia de pelos en ellas, o son útiles para la identificación. El insecto posee seis patas, cada una segmentada en coxa, trocánter, fémur, tibia y tarso. El tarso, el segmento distal de la pata, culmina en varias uñas tarsales, cuya morfología puede tener valor taxonómico.

El abdomen, en la vista dorsal, queda oculto bajo la protección de los élitros, y la observación de las placas ventrales.

Figura 1.  C. sordidus vista desde el estereomicroscopio Better Scientific Q170-T Germany

Tasa de mortalidad del C. sordidus bajo el efecto de los extractos de S. pimpinellifolium y N. tabacum L

La Tabla 2 presenta los resultados del efecto de extractos de dos especies de plantas, S. pimpinellifolium y N. tabacum L., sobre la mortalidad del picudo negro C. sordidus.

Los resultados generales indican una tendencia de aumento de la mortalidad a través del tiempo para la mayoría de los tratamientos, sugiriendo un efecto acumulativo de los extractos. Asimismo, dentro de cada tipo de extracto, se observa una relación dosis-respuesta, donde concentraciones más elevadas generalmente resultan en porcentajes de mortalidad superiores en cada punto temporal evaluado.

Es significativa la diferencia en la efectividad entre los dos extractos de plantas, ya que N. tabacum L. demostró ser consistentemente más eficaz en inducir la mortalidad en C. sordidus en comparación con S. pimpinellifolium a concentraciones y tiempos equivalentes. El grupo de control, al no presentar mortalidad alguna, confirma que la mortalidad observada en los grupos tratados es directamente atribuible a la acción de los extractos vegetales.

Tabla 2.  Efecto de los extractos de S. pimpinellifolium y N. tabacum L. sobre C. sordidus
% de mortalidad S. pimpinellifolium N. tabacum L. Control E.E.
20 % 60 % 100 % 20 % 60 % 100 %
Días T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
4 0e 0e 10d 22c 54b 68a 0e 3,67
8 14f 24e 35d 46c 85b 100a 0g 1,93
12 29e 42d 60c 78b 100a 100a 0f 2,03

E.E.: Error estándar. Las letras iguales en una misma fila no indican diferencias estadísticamente significativas

El análisis estadístico indica que, el extracto de N. tabacum L. es el más efectivo, esto con base a (mayor concentración, mayor mortalidad) y respecto al tiempo de exposición (mayor tiempo, mayor mortalidad) tiene un efecto significativo en la mortalidad de C. sordidus.

Discusión

 

Los alcaloides, notoriamente la nicotina en el tabaco, son bien conocidos por su actividad insecticida (1313. Tlak Gajger I, Dar SA. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects [Internet]. 2021;12(3):189. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12030189 ). Actúan principalmente como neurotoxinas en los insectos (1414. Soto A. Manejo alternativo de ácaros plagas. Rev Ciencias Agrícolas [Internet]. 2013;30(2):34-44. Available from: https://revistas.udenar.edu.co/index.php/rfacia/article/view/1673 ). La presencia de otros alcaloides en el tomate, aunque en menor concentración, también podría contribuir a sus mecanismos de defensa contra insectos plaga (1515. Nava-Pérez E, García-Gutiérrez C, Camacho-Báez JR, Vázquez-Montoya EL. Bioplaguicidas: una opción para el control biológico de plagas. Ra Ximhai [Internet]. 2012;8(3b):17-29. Available from: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=46125177003 ). Se ha demostrado que ciertos alcaloides de solanáceas poseen actividad insecticida contra diversas especies (1616. Hernández Carvajal JE, Florez Orjuela Y, Vallejo GA. Evaluación de la actividad insecticida de Solanum macranthum (Dunal) sobre ninfas de los estadios IV y V de Rhodnius pallescens, Rhodnius prolixus, Rhodnius colombiensis. Rev Cuba Farm [Internet]. 2010;44(1):71-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S0034-75152010000100009&script=sci_arttext ). Así mismo, algunos triterpenos han demostrado tener efectos insecticidas, antialimentarios y de alteración del crecimiento en insectos (1717. López IC, Rivera VE, Yánez ÁW, Artieda JR, Elevación Villacres G. Evaluación de la actividad insecticida de Schinus molle sobre Premnotrypes vorax en papa. Agron Costarric [Internet]. 2017;41(2):93-101. Available from: http://dx.doi.org/10.15517/rac.v41i2.31302 ). Su presencia en ambos extractos sugiere un posible papel en la protección contra insectos fitófagos.

Compuestos polifenólicos pueden actuar como disuasorios de la alimentación, tóxicos o reguladores del crecimiento en insectos (1818. López JJ, Chirinos DT, Ponce WH, Solórzano RF, Alarcón JP. Actividad insecticida de formulados botánicos sobre el gusano cogollero, Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Rev Colomb Entomol [Internet]. 2022;48(1). Available from: https://doi.org/10.25100/socolen.v48i1.11739 ). Algunos flavonoides pueden inhibir enzimas digestivas en insectos, mientras que los fenoles pueden actuar como antioxidantes en las plantas, contribuyendo indirectamente a la defensa al mejorar la resistencia al estrés inducido por insectos (1919. Baguer EA, Menéndez-Álvarez E. El Mango (Mangifera indica L.) como modelo de estudios de los flavonoides. Rev Investig la Univ Le Cordon Bleu [Internet]. 2024;11(2):76-86. Available from: https://doi.org/10.36955/RIULCB.2024v11n2.007 ). Los taninos, debido a su capacidad para unirse a proteínas, pueden reducir la digestibilidad de las hojas para los insectos herbívoros, actuando como antialimentarios (2020. García DSC, Yucailla VA, Lozano NVA, González YT. Efecto de biocida natural a base de (ambrosia peruviana, azadirachta indica) para el control de garrapatas en bovinos. Rev Investig Talent [Internet]. 2022;9(1):60-8. Available from: https://doi.org/10.33789/talentos.9.1.161 ). Su presencia en tomate y tabaco podría contribuir a la inducción de resistencia de estas plantas a ciertos insectos.

Algunas saponinas han mostrado actividad insecticida y antialimentaria al interferir con la permeabilidad de las membranas celulares de los insectos o al actuar como disruptores del sistema digestivo (2121. Molina-Maldonado JR, Ruiz-Sánchez E, Andueza-Noh RH, Garruña-Hernández R, Gutiérrez-Miceli FA, Santos LF da C-D, et al. Actividad biológica de extractos etanólicos de Ardisia compressa Kunth sobre la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius 1889, Hemiptera: Aleyrodidae) y una cepa de Fusarium oxysporum Schltdl. Polibotánica [Internet]. 2025;(59):295-312. Available from: https://doi.org/10.18387/polibotanica.59.19 ). La presencia de saponinas en ambos extractos podría ser un factor natural en su interacción con insectos. La presencia de estos metabolitos secundarios con actividad bioinsecticida conocida en S. pimpinellifolium y N. tabacum sugiere que extractos o compuestos aislados de estas plantas podrían tener potencial para el desarrollo de insecticidas biológicos. Los bioinsecticidas derivados de plantas ofrecen una alternativa más sostenible y menos dañina para el medio ambiente en comparación con los insecticidas sintéticos tradicionales (2222. Solís LKM, Chiriguaya FDCU, Pizarro VHR, Peralta ERM. Uso del ácido piroleñoso como una alternativa para el manejo del cogollero (Spodoptera frugiperda), en el cultivo de maíz (Zea mays) con dos mecanismos de control. Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):997-1026. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.237 ).

El picudo negro del plátano (C. sordidus) se distingue taxonómicamente por su rostro prominente, élitros estriados y coloración oscura, características fácilmente observables bajo un estereomicroscopio (2323. Velepucha YE, Guerrero JNQ, Batista RMG. Determinación de la eficiencia de diferentes trampas para el control de picudo negro (Cosmopolites sordidus G.) en banano orgánico. Rev Científica Agroecosistemas [Internet]. 2019;7(1):171-80. Available from: https://aes.ucf.edu.cu/index.php/aes/article/view/263 ). Estas particularidades morfológicas son cruciales para su identificación y diferenciación de otros gorgojos plaga. La identificación precisa de las especies de picudos es fundamental para implementar estrategias de manejo efectivas. La morfología externa, aunque básica, proporciona las primeras claves para el reconocimiento de C. sordidus en campo y laboratorio.

Conclusiones

 

Los resultados del tamizaje fitoquímico indican que tanto el tomate (S. pimpinellifolium) como el tabaco (N. tabacum) contienen una variedad similar de metabolitos secundarios, incluyendo triterpenos, alcaloides, flavonoides, fenoles, azúcares reductores, taninos y saponinas, por lo que se sugiere profundizar estudios que se centren en investigar sus concentraciones.

La observación estereoscópica revela que Cosmopolites sordidus presenta características morfológicas distintivas, como su rostro alargado, élitros estriados y coloración oscura, que permiten su identificación preliminar.

El extracto de N. tabacum L. es significativamente más efectivo que el extracto de S. pimpinellifolium para causar la muerte de C. sordidus. En la medida que se incrementa la concentración del extracto y el tiempo de exposición para ambas especies N. tabacum L. demostró mayor potencial insecticida incluso a concentraciones más bajas.

Bibliografía

 

1. Chiriguaya FDCU, Solís LKM, Peralta ERM, Pérez JDL, Guzmán ALS. Control de picudo negro en el cultivo de plátano (Musa paradisiaca). Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):501-13. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.209

2. Manu N, Schilling MW, Phillips TW. Natural and synthetic repellents for pest management of the storage mite Tyrophagus putrescentiae (Schrank)(Sarcoptiformes: Acaridae). Insects [Internet]. 2021;12(8):711. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12080711

3. Orantes-García C, Moreno-Moreno RA, Caballero-Roque A, Farrera-Sarmiento O. Plantas utilizadas en la medicina tradicional de comunidades campesinas e indígenas de la Selva Zoque, Chiapas, México. Boletín Latinoam y del Caribe plantas Med y aromáticas [Internet]. 2018;17(5):503-21. Available from: https://www.blacpma.ms-editions.cl/index.php/blacpma/article/view/134

4. García-Sánchez AN, Chávez EC, Beache MB, Fuentes YMO, Ortiz JCD. Efecto de antibiosis, antixenosis y la variación natural de tricomas de especies silvestres y comerciales en tomate sobre el desarrollo de Bactericera cockerelli. Sci Agropecu [Internet]. 2023;14(4):501-9. Available from: http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2023.041

5. Lara YDM, Morales PA, Garzón JS, Olaya JFP. Componentes bioactivos del tomate y su posible poder antimicrobiano: estudio in vitro. Rev Cuba Med Nat y Tradic [Internet]. 2020;3. Available from: http://www.revmnt.sld.cu/index.php/rmnt/article/view/124

6. Su T. Resistance and resistance management of biorational larvicides for mosquito control. J Florida Mosq Control Assoc [Internet]. 2022;69(1). Available from: https://doi.org/10.32473/jfmca.v69i1.130641

7. Villalta II. Toxicidad vegetal. La Univ [Internet]. 2015;(25). Available from: https://revistas.ues.edu.sv/index.php/launiversidad/article/view/799

8. Romero R, Morales P, Pino O, Cermeli M, González E. Actividad insecticida de seis extractos etanólicos de plantas sobre mosca blanca. Rev Protección Veg [Internet]. 2015;30:23-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S1010-27522015000400005&script=sci_arttext&tlng=en

9. Altieri MA, Nicholls CI, Dinelli G, Negri L. Towards an agroecological approach to crop health: reducing pest incidence through synergies between plant diversity and soil microbial ecology. npj Sustain Agric [Internet]. 2024;2(1):6. Available from: https://doi.org/10.1038/s44264-024-00016-2

10. Tavares WR, Barreto M do C, Seca AML. Aqueous and ethanolic plant extracts as bio-insecticides-Establishing a bridge between raw scientific data and practical reality. Plants [Internet]. 2021;10(5):920. Available from: https://doi.org/10.3390/plants10050920

11. Burgo Bencomo OB. El conocimiento tradicional y la etnobotánica en la gestión de la agricultura familiar. Rev Univ y Soc [Internet]. 2021;13(4):431-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S2218-36202021000400431&script=sci_arttext

12. Acosta Muñoz LE, Zoria Java J. Conocimientos tradicionales Ticuna en la agricultura de chagra y los mecanismos innovadores para su protección. Bol do Mus Para Emílio Goeldi Ciências Humanas [Internet]. 2012;7:417-33. Available from: https://doi.org/10.1590/S1981-81222012000200007

13. Tlak Gajger I, Dar SA. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects [Internet]. 2021;12(3):189. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12030189

14. Soto A. Manejo alternativo de ácaros plagas. Rev Ciencias Agrícolas [Internet]. 2013;30(2):34-44. Available from: https://revistas.udenar.edu.co/index.php/rfacia/article/view/1673

15. Nava-Pérez E, García-Gutiérrez C, Camacho-Báez JR, Vázquez-Montoya EL. Bioplaguicidas: una opción para el control biológico de plagas. Ra Ximhai [Internet]. 2012;8(3b):17-29. Available from: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=46125177003

16. Hernández Carvajal JE, Florez Orjuela Y, Vallejo GA. Evaluación de la actividad insecticida de Solanum macranthum (Dunal) sobre ninfas de los estadios IV y V de Rhodnius pallescens, Rhodnius prolixus, Rhodnius colombiensis. Rev Cuba Farm [Internet]. 2010;44(1):71-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S0034-75152010000100009&script=sci_arttext

17. López IC, Rivera VE, Yánez ÁW, Artieda JR, Elevación Villacres G. Evaluación de la actividad insecticida de Schinus molle sobre Premnotrypes vorax en papa. Agron Costarric [Internet]. 2017;41(2):93-101. Available from: http://dx.doi.org/10.15517/rac.v41i2.31302

18. López JJ, Chirinos DT, Ponce WH, Solórzano RF, Alarcón JP. Actividad insecticida de formulados botánicos sobre el gusano cogollero, Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Rev Colomb Entomol [Internet]. 2022;48(1). Available from: https://doi.org/10.25100/socolen.v48i1.11739

19. Baguer EA, Menéndez-Álvarez E. El Mango (Mangifera indica L.) como modelo de estudios de los flavonoides. Rev Investig la Univ Le Cordon Bleu [Internet]. 2024;11(2):76-86. Available from: https://doi.org/10.36955/RIULCB.2024v11n2.007

20. García DSC, Yucailla VA, Lozano NVA, González YT. Efecto de biocida natural a base de (ambrosia peruviana, azadirachta indica) para el control de garrapatas en bovinos. Rev Investig Talent [Internet]. 2022;9(1):60-8. Available from: https://doi.org/10.33789/talentos.9.1.161

21. Molina-Maldonado JR, Ruiz-Sánchez E, Andueza-Noh RH, Garruña-Hernández R, Gutiérrez-Miceli FA, Santos LF da C-D, et al. Actividad biológica de extractos etanólicos de Ardisia compressa Kunth sobre la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius 1889, Hemiptera: Aleyrodidae) y una cepa de Fusarium oxysporum Schltdl. Polibotánica [Internet]. 2025;(59):295-312. Available from: https://doi.org/10.18387/polibotanica.59.19

22. Solís LKM, Chiriguaya FDCU, Pizarro VHR, Peralta ERM. Uso del ácido piroleñoso como una alternativa para el manejo del cogollero (Spodoptera frugiperda), en el cultivo de maíz (Zea mays) con dos mecanismos de control. Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):997-1026. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.237

23. Velepucha YE, Guerrero JNQ, Batista RMG. Determinación de la eficiencia de diferentes trampas para el control de picudo negro (Cosmopolites sordidus G.) en banano orgánico. Rev Científica Agroecosistemas [Internet]. 2019;7(1):171-80. Available from: https://aes.ucf.edu.cu/index.php/aes/article/view/263

Cultivos Tropicales Vol. 46, No. 4, octubre-diciembre 2025, ISSN: 1819-4087
 
Original article

Effect of extracts of Solanum pimpinellifolium and Nicotiana tabacum L. against the black weevil (Cosmopolites sordidus)

 

iDJosé Humberto Vera Rodríguez1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.*✉:humbertorichi@hotmail.com

iDJosé Omar Salavarría Melo1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

iDHenry Paúl Villón Leoro1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

iDDaicy Veronica Rios Catota2Universidad Técnica Estatal de Quevedo. Avenida Carlos J. Arosemena 38, Quevedo, Ecuador, 120550.

iDEdison Macgyver Barragán Taco3Universidad Estatal Península de Santa Elena. Avenida principal La Libertad - Santa Elena, La Libertad, Ecuador, 240207.

iDIngrid Lourdes Sandoval Endara4Universidad de Guayaquil. Avenida Delta, Guayaquil 090510, Ecuador.

iDAngie Pamela Lopez Orellana5Universidad Estatal de Milagro. Cdla. Universitaria “Dr. Rómulo Minchala Murillo” - km. 11/2 vía Milagro - Virgen de Fátima; Milagro, Guayas, Ecuador. 091703.


1Universidad Agraria del Ecuador UAE. Vía Puerto Marítimo - Avenida 25 de Julio y Pío Jaramillo (Campus principal) Guayaquil, Guayas, Ecuador, 091307.

2Universidad Técnica Estatal de Quevedo. Avenida Carlos J. Arosemena 38, Quevedo, Ecuador, 120550.

3Universidad Estatal Península de Santa Elena. Avenida principal La Libertad - Santa Elena, La Libertad, Ecuador, 240207.

4Universidad de Guayaquil. Avenida Delta, Guayaquil 090510, Ecuador.

5Universidad Estatal de Milagro. Cdla. Universitaria “Dr. Rómulo Minchala Murillo” - km. 11/2 vía Milagro - Virgen de Fátima; Milagro, Guayas, Ecuador. 091703.

 

*Author for correspondence: humbertorichi@hotmail.com

Abstract

The objective of this research was to evaluate the bioinsecticidal effect of extracts of field tomato (Solanum pimpinellifolium) and tobacco (Nicotiana tabacum L.) against the black weevil (Cosmopolites sordidus). The extracts were obtained from dried leaves, ground, and bioactive compounds extracted with ethanol. Secondary metabolites (triterpenes, alkaloids, flavonoids, phenols, saponins, and reducing sugars) were identified. Insects were captured using Musa paradisiaca L. plantain pseudostem traps baited with cocoa placenta. Seven treatments with 10 replicates were established; each extract was exposed to a concentration of 20, 60, 100 %, and a control. Mortality was evaluated up to 12 days. The design was completely randomized; data were analyzed using ANOVA and Tukey's test (p<0.05). Morphological characterization of the weevil showed an elongated body measuring 10-14 mm, dark coloration, a prominent beak, bent antennae, and fused elytra with striations. Extracts from both plants induced mortality in C. sordidus, increasing with concentration and time; N. tabacum L. was significantly more effective than S. pimpinellifolium. In conclusion, phytochemical screening revealed the presence of bioactive compounds with similar insecticidal effects on tomato and tobacco. Morphological identification confirmed the species C. sordidus. The tobacco extract was more effective against the weevil, with mortality dependent on concentration and time, demonstrating a greater insecticidal effect than tomato.

Key words: 
Banana, biopesticide, insect, secondary metabolites, Musaceae, plantain

Introduction

 

The black weevil (Cosmopolites sordidus) is a species of curculionoid beetle belonging to the family Curculionidae. It is one of the main pests affecting banana and plantain crops, causing significant losses in agricultural production worldwide (11. Chiriguaya FDCU, Solís LKM, Peralta ERM, Pérez JDL, Guzmán ALS. Control de picudo negro en el cultivo de plátano (Musa paradisiaca). Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):501-13. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.209 ). Its adaptability and the resistance it has developed to chemical pesticides have prompted the search for alternative control methods that are more sustainable and less harmful to the environment (22. Manu N, Schilling MW, Phillips TW. Natural and synthetic repellents for pest management of the storage mite Tyrophagus putrescentiae (Schrank)(Sarcoptiformes: Acaridae). Insects [Internet]. 2021;12(8):711. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12080711 ). In this context, plant extracts such as those from wild tomato (Solanum pimpinellifolium), an herbaceous plant from the Solanaceae family, and tobacco (Nicotiana tabacum L.) have emerged as promising options for managing this pest.

Wild tomato, a native plant of the Americas, has traditionally been used for its edible fruits (33. Orantes-García C, Moreno-Moreno RA, Caballero-Roque A, Farrera-Sarmiento O. Plantas utilizadas en la medicina tradicional de comunidades campesinas e indígenas de la Selva Zoque, Chiapas, México. Boletín Latinoam y del Caribe plantas Med y aromáticas [Internet]. 2018;17(5):503-21. Available from: https://www.blacpma.ms-editions.cl/index.php/blacpma/article/view/134 ). Recently, its potential as a natural insecticide has been investigated due to the presence of bioactive compounds that can affect the physiology and behavior of various pest insects (44. García-Sánchez AN, Chávez EC, Beache MB, Fuentes YMO, Ortiz JCD. Efecto de antibiosis, antixenosis y la variación natural de tricomas de especies silvestres y comerciales en tomate sobre el desarrollo de Bactericera cockerelli. Sci Agropecu [Internet]. 2023;14(4):501-9. Available from: http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2023.041 ). Interest in its use as a bioinsecticide stems from the need to find viable alternatives that minimize environmental impact and protect human health (55. Lara YDM, Morales PA, Garzón JS, Olaya JFP. Componentes bioactivos del tomate y su posible poder antimicrobiano: estudio in vitro. Rev Cuba Med Nat y Tradic [Internet]. 2020;3. Available from: http://www.revmnt.sld.cu/index.php/rmnt/article/view/124 ).

On the other hand, Tobacco has long been recognized for its insecticidal properties. Nicotine and other alkaloids present in tobacco leaves are known for their effectiveness in controlling various pests (66. Su T. Resistance and resistance management of biorational larvicides for mosquito control. J Florida Mosq Control Assoc [Internet]. 2022;69(1). Available from: https://doi.org/10.32473/jfmca.v69i1.130641 ). However, the use of tobacco in agriculture must be carefully managed due to its toxicity and the potential to affect non-target organisms (77. Villalta II. Toxicidad vegetal. La Univ [Internet]. 2015;(25). Available from: https://revistas.ues.edu.sv/index.php/launiversidad/article/view/799 ). Research into its application as a bioinsecticide aims to maximize its benefits while minimizing associated risks.

The use of plant extracts for biological pest control aligns with current trends in sustainable agriculture. Wild tomato and tobacco extracts not only represent effective options, but can also be integrated into pest management strategies that promote biodiversity and soil health (88. Romero R, Morales P, Pino O, Cermeli M, González E. Actividad insecticida de seis extractos etanólicos de plantas sobre mosca blanca. Rev Protección Veg [Internet]. 2015;30:23-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S1010-27522015000400005&script=sci_arttext&tlng=en ). Evaluating the bioinsecticidal effect of these extracts against the black weevil requires a detailed analysis of their efficacy and the conditions that may influence their performance (99. Altieri MA, Nicholls CI, Dinelli G, Negri L. Towards an agroecological approach to crop health: reducing pest incidence through synergies between plant diversity and soil microbial ecology. npj Sustain Agric [Internet]. 2024;2(1):6. Available from: https://doi.org/10.1038/s44264-024-00016-2 ). Factors such as extract concentration, application method, and environmental conditions are critical in determining their effectiveness. These studies are essential for establishing application protocols that ensure effective pest control without compromising the safety of surrounding ecosystems (1010. Tavares WR, Barreto M do C, Seca AML. Aqueous and ethanolic plant extracts as bio-insecticides-Establishing a bridge between raw scientific data and practical reality. Plants [Internet]. 2021;10(5):920. Available from: https://doi.org/10.3390/plants10050920 ).

Traditional knowledge regarding the use of plants in agriculture can offer valuable insights and practices that complement scientific research (1111. Burgo Bencomo OB. El conocimiento tradicional y la etnobotánica en la gestión de la agricultura familiar. Rev Univ y Soc [Internet]. 2021;13(4):431-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S2218-36202021000400431&script=sci_arttext ). Collaboration among farmers, researchers, and communities can facilitate the implementation of locally sourced solutions and promote resilience in agricultural production (1212. Acosta Muñoz LE, Zoria Java J. Conocimientos tradicionales Ticuna en la agricultura de chagra y los mecanismos innovadores para su protección. Bol do Mus Para Emílio Goeldi Ciências Humanas [Internet]. 2012;7:417-33. Available from: https://doi.org/10.1590/S1981-81222012000200007 ). This interaction may lead to the development of innovative strategies that not only control the black weevil but also strengthen long-term agricultural sustainability.

Finally, the objective of this research is to evaluate the bioinsecticidal effect of wild tomato and tobacco extracts against the black weevil (C. sordidus). The results are expected to contribute to a better understanding of their potential as pest management tools and to the promotion of more sustainable and environmentally friendly agricultural practices.

Materials and Methods

 

Study Site

 

The experimental work was conducted in the entomology laboratory of the Faculty of Agricultural Sciences at the Universidad Estatal Península de Santa Elena (UPSE), Ecuador. The collection of the black weevil (Cosmopolites sordidus) was carried out in a banana plantation located at Santa Trinidad farm in Juan Montalvo locality.

Preparation of Plant Extracts

 

Collection and drying of plant material

 

Leaves of wild tomato (Solanum pimpinellifolium) and tobacco (Nicotiana tabacum L.) were collected and washed with distilled water to remove surface residues. They were then dried at room temperature in darkness with adequate ventilation for 72 hours. Afterward, the samples were placed in a RONCO food dehydrator, Model FD-6000, at 45 °C for 24 hours to accelerate the drying process.

Grinding of dried plant material

 

Once dried, the plant samples were ground using a FOSS laboratory mill, Model CT-293, until a fine powder was obtained.

Extraction of bioactive compounds

 

Twenty grams of each powdered sample were weighed and placed in an Erlenmeyer flask with 80 % ethanol as the extraction solvent, using a solvent-to-plant ratio of 1:10 (w/v). This aimed to extract a broad range of polar and semi-polar compounds. The mixture was kept under constant agitation in a VWR orbital incubator shaker, Model 5000-I, for 48 hours at 25 °C to enhance extraction efficiency.

Filtration of the extract

 

After extraction, the liquid extract was separated from the solid residue using Whatman No. 1 filter paper and a decanting funnel. The filtrate was stored in dark, airtight vials at 4-8 °C to prevent degradation of potential bioactive compounds.

Determination of bioactive compounds

 

To identify triterpenes or sterols, the Liebermann-Burchard test was used. One drop of sulfuric acid was added to 1 mL of cold acetic anhydride, then mixed with 10 mg of dried plant extract dissolved in chloroform. The presence of these compounds was determined by observing color changes over 60 minutes.

To confirm the presence of alkaloids, the Mayer and Wagner tests were performed. Three drops of each reagent were added to 1 mL of extract. A white precipitate (Mayer) and a reddish-brown precipitate (Wagner) indicated the presence of alkaloids.

Flavonoids were identified using the Shinoda test. Magnesium shavings and three drops of concentrated hydrochloric acid were added to 1 mL of extract. A strong orange color with bubbling indicated a positive result.

Phenols were confirmed by adding two drops of ferric chloride to the extract. A dark green color indicated their presence.

Saponins were detected by shaking the extract vigorously for 30 seconds. The formation of stable foam lasting three minutes confirmed their presence.

Reducing sugars were identified by heating 0.5 mL of extract with 1 mL of Fehling’s solution A and 1 mL of solution B in a water bath. A dark red precipitate indicated a positive result.

Collection of Black Weevil

 

Traps were made using pseudostems cut in a “V” shape and placed on the ground. To enhance effectiveness, cacao placenta (CCN-51) was added to the center as an attractant, creating a space for insect entry. Collected black weevil specimens were transported to the laboratory for taxonomic identification and life stage classification using a Better Scientific Q170-T trinocular stereomicroscope.

Experimental Design

 

Experimental units were distributed in individual plastic containers (500 mL volume), each ventilated with ten 2-mm diameter perforations to ensure proper air exchange. Each container served as one experimental unit, randomly assigned with three adult C. sordidus individuals. As a food source and substrate for treatment application, fragments of Musa paradisiaca L. stem (5 cm², ≈10 g fresh weight) were introduced and assigned as follows:

  • T1: S. pimpinellifolium extract 20 %

  • T2: S. pimpinellifolium extract 60 %

  • T3: S. pimpinellifolium extract 100 %

  • T4: N. tabacum L. extract 20 %

  • T5: N. tabacum L. extract 60 %

  • T6: N. tabacum L. extract 100 %

  • T7: Control

Insect mortality percentage was evaluated at 4, 8, and 12 days. The study assessed three extract concentrations (20, 60, and 100 %) over a 12-day period, with mortality recorded at each interval.

The experiment followed a completely randomized design (CRD), with seven treatments and ten replicates. Data were analyzed using one-way analysis of variance (ANOVA), and when significant differences were found, mean comparisons were performed using Tukey’s test (HSD) at p < 0.05, with InfoStat software version 2020.

Results

 

Phytochemical screening. Table 1 presents the results of the phytochemical screening of Solanum pimpinellifolium (wild tomato) and Nicotiana tabacum L. (tobacco). This analysis is qualitative in nature and indicates the presence (+) of chemical compounds (triterpenes, alkaloids, flavonoids, phenols, reducing sugars, and tannins) in the plant extracts.

Table 1.  Results of the phytochemical screening of wild tomato and tobacco plants
Compound Reference Method Tomato Tobacco
Triterpenes Lieberrmann-Burchard + +
Alkaloids Mayer Reactive + +
Wagner Reactive + +
Flavonoids Shinoda + +
Phenols Ferric chloride + +
Reducing sugars Fehling + +
Tannins Foam + +
Saponins Foam + +

(+) Positive

Taxonomic Characterization of the Captured Black Weevil Species

 

Figure 1 shows the banana black weevil (Cosmopolites sordidus) observed under a stereomicroscope. The characterization reveals adult-stage insects with moderate body sizes ranging from 10 to 14 mm in length, featuring an elongated and cylindrical shape. Their coloration typically varies from black to dark brown, with a hard and shiny exoskeleton surface. A distinctive feature of this insect, as a member of the Curculionidae family, is the presence of a prominent and elongated snout projecting from the head. The antennae are inserted laterally on the rostrum and exhibit an elbowed structure with a club-shaped tip. The compound eyes are small and located on the sides of the head. At the tip of the rostrum, strong and sclerotized mandibles are visible, adapted for chewing and piercing plant tissue.

The thorax is divided into segments, with the prothorax bearing the first pair of legs. The elytra, which are modified and hardened forewings, cover the abdomen and the second pair of membranous wings used for flight. In C. sordidus, the elytra are fused and display well-defined longitudinal striae (grooves) or parallel lines along their surface. The number and characteristics of these striae, as well as the absence of hairs on them, are useful for identification. The insect has six legs, each segmented into coxa, trochanter, femur, tibia, and tarsus. The tarsus, the distal segment of the leg, ends in several tarsal claws, whose morphology may hold taxonomic value. The abdomen, in dorsal view, remains hidden beneath the protective elytra, while the ventral plates are observable from below.

Figure 1.  C. sordidus viewed under the Better Scientific Q170-T stereomicroscope (Germany)

Mortality rate of C sordidus under the effect of Solanum pimpinellifolium and Nicotiana tabacum L. extracts

Table 2 presents the results of the effect of plant extracts from two species, Solanum pimpinellifolium and Nicotiana tabacum L., on the mortality of the black weevil Cosmopolites sordidus.

Overall results show a trend of increasing mortality over time for most treatments, suggesting a cumulative effect of the extracts. Additionally, within each type of extract, a dose-response relationship was observed, where higher concentrations generally resulted in higher mortality percentages at each evaluated time point.

A significant difference in effectiveness was noted between the two plant extracts, with N. tabacum L. consistently demonstrating greater efficacy in inducing mortality in C. sordidus compared to S. pimpinellifolium at equivalent concentrations and time intervals. The control group, which showed no mortality, confirms that the observed insect deaths in treated groups were directly attributable to the action of the plant extracts.

Table 2.  Effect of Solanum pimpinellifolium and Nicotiana tabacum L. extracts on C. sordidus
Mortality rate (%) S. pimpinellifolium N. tabacum L. Control S.E.
20 % 60 % 100 % 20 % 60 % 100 %
Days T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
4 0e 0e 10d 22c 54b 68a 0e 3.67
8 14f 24e 35d 46c 85b 100a 0g 1.93
12 29e 42d 60c 78b 100a 100a 0f 2.03

S.E.: Standard error. Identical letters within the same row indicate no statistically significant differences

Statistical analysis indicates that the Nicotiana tabacum L. extract is the most effective, based on the observed relationship between higher concentrations and increased mortality, as well as longer exposure times and higher mortality rates. These factors had a significant effect on the mortality of C. sordidus.

Discussion

 

Alkaloids, most notably nicotine in tobacco are well known for their insecticidal activity (1313. Tlak Gajger I, Dar SA. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects [Internet]. 2021;12(3):189. Available from: https://doi.org/10.3390/insects12030189 ). They primarily act as neurotoxins in insects (1414. Soto A. Manejo alternativo de ácaros plagas. Rev Ciencias Agrícolas [Internet]. 2013;30(2):34-44. Available from: https://revistas.udenar.edu.co/index.php/rfacia/article/view/1673 ). The presence of other alkaloids in wild tomato, although in lower concentrations, may also contribute to its defense mechanisms against pest insects (1515. Nava-Pérez E, García-Gutiérrez C, Camacho-Báez JR, Vázquez-Montoya EL. Bioplaguicidas: una opción para el control biológico de plagas. Ra Ximhai [Internet]. 2012;8(3b):17-29. Available from: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=46125177003 ). Certain alkaloids found in solanaceous plants have demonstrated insecticidal activity against various species (1616. Hernández Carvajal JE, Florez Orjuela Y, Vallejo GA. Evaluación de la actividad insecticida de Solanum macranthum (Dunal) sobre ninfas de los estadios IV y V de Rhodnius pallescens, Rhodnius prolixus, Rhodnius colombiensis. Rev Cuba Farm [Internet]. 2010;44(1):71-8. Available from: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S0034-75152010000100009&script=sci_arttext ). Similarly, some triterpenes have shown insecticidal, antifeedant, and growth-disrupting effects in insects (1717. López IC, Rivera VE, Yánez ÁW, Artieda JR, Elevación Villacres G. Evaluación de la actividad insecticida de Schinus molle sobre Premnotrypes vorax en papa. Agron Costarric [Internet]. 2017;41(2):93-101. Available from: http://dx.doi.org/10.15517/rac.v41i2.31302 ). Their presence in both extracts suggests a potential role in protecting against phytophagous insects.

Polyphenolic compounds may act as feeding deterrents, toxins, or growth regulators in insects (1818. López JJ, Chirinos DT, Ponce WH, Solórzano RF, Alarcón JP. Actividad insecticida de formulados botánicos sobre el gusano cogollero, Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Rev Colomb Entomol [Internet]. 2022;48(1). Available from: https://doi.org/10.25100/socolen.v48i1.11739 ). Some flavonoids can inhibit digestive enzymes in insects, while phenols may function as antioxidants in plants, indirectly contributing to defense by enhancing resistance to insect-induced stress (1919. Baguer EA, Menéndez-Álvarez E. El Mango (Mangifera indica L.) como modelo de estudios de los flavonoides. Rev Investig la Univ Le Cordon Bleu [Internet]. 2024;11(2):76-86. Available from: https://doi.org/10.36955/RIULCB.2024v11n2.007 ). Tannins, due to their ability to bind to proteins, can reduce leaf digestibility for herbivorous insects, acting as antifeedants (2020. García DSC, Yucailla VA, Lozano NVA, González YT. Efecto de biocida natural a base de (ambrosia peruviana, azadirachta indica) para el control de garrapatas en bovinos. Rev Investig Talent [Internet]. 2022;9(1):60-8. Available from: https://doi.org/10.33789/talentos.9.1.161 ). Their presence in tomato and tobacco may contribute to induced resistance in these plants against certain insect pests.

Some saponins have demonstrated insecticidal and antifeedant activity by interfering with insect cell membrane permeability or disrupting the digestive system (2121. Molina-Maldonado JR, Ruiz-Sánchez E, Andueza-Noh RH, Garruña-Hernández R, Gutiérrez-Miceli FA, Santos LF da C-D, et al. Actividad biológica de extractos etanólicos de Ardisia compressa Kunth sobre la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius 1889, Hemiptera: Aleyrodidae) y una cepa de Fusarium oxysporum Schltdl. Polibotánica [Internet]. 2025;(59):295-312. Available from: https://doi.org/10.18387/polibotanica.59.19 ). The presence of saponins in both extracts may be a natural factor in their interaction with insects. The presence of these secondary metabolites with known bioinsecticidal activity in S. pimpinellifolium and N. tabacum suggests that extracts or isolated compounds from these plants may have potential for the development of botanical insecticides. Plant-derived bioinsecticides offer a more sustainable and environmentally friendly alternative to traditional synthetic insecticides (2222. Solís LKM, Chiriguaya FDCU, Pizarro VHR, Peralta ERM. Uso del ácido piroleñoso como una alternativa para el manejo del cogollero (Spodoptera frugiperda), en el cultivo de maíz (Zea mays) con dos mecanismos de control. Rev Científica Multidiscip G-nerando [Internet]. 2024;5(1):997-1026. Available from: https://doi.org/10.60100/rcmg.v5i1.237 ).

The banana black weevil (C. sordidus) is taxonomically distinguished by its prominent snout, striated elytra, and dark coloration features easily observable under a stereomicroscope (2323. Velepucha YE, Guerrero JNQ, Batista RMG. Determinación de la eficiencia de diferentes trampas para el control de picudo negro (Cosmopolites sordidus G.) en banano orgánico. Rev Científica Agroecosistemas [Internet]. 2019;7(1):171-80. Available from: https://aes.ucf.edu.cu/index.php/aes/article/view/263 ). These morphological traits are crucial for its identification and differentiation from other pest weevils. Accurate identification of weevil species is essential for implementing effective management strategies. External morphology, though basic, provides the first clues for recognizing C. sordidus in both field and laboratory settings.

Conclusions

 

Phytochemical screening results indicate that both tomato (Solanum pimpinellifolium) and tobacco (Nicotiana tabacum L.) contain a similar array of secondary metabolites, including triterpenes, alkaloids, flavonoids, phenols, reducing sugars, tannins, and saponins. These findings suggest the need for further studies focused on quantifying the concentrations of these compounds.

Stereoscopic observation reveals that C. sordidus exhibits distinctive morphological features such as an elongated rostrum, striated elytra, and dark coloration that allow for preliminary identification.

The extract of N. tabacum L. proved significantly more effective than that of S. pimpinellifolium in causing mortality in C. sordidus. As extract concentration and exposure time increased, N. tabacum L. consistently demonstrated greater insecticidal potential, even at lower concentrations.