Introducción
⌅El mango (Mangifera indica L.) es considerada una de las frutas tropicales más importantes a nivel mundial, no solo por su sabor característico y su amplia variedad de usos culinarios, sino también por su alto valor nutricional (11. Wang P, Luo Y, Huang J, Gao S, Zhu G, Dang Z, et al. The genome evolution and domestication of tropical fruit mango. Genome Biol. 2020;21(1):60. Available from: https://doi.org/10.1186/s13059-020-01959-8 ). Es una fuente abundante en vitaminas A, C y E, así como en compuestos antioxidantes y fibra, lo que ha impulsado un incremento sostenido en su demanda global (22. Lebaka VR, Wee Y-J, Ye W, Korivi M. Nutritional composition and bioactive compounds in three different parts of mango fruit. Int J Environ Res Public Health. 2021;18(2):741. Available from: https://doi.org/10.3390/ijerph18020741 ). Sin embargo, al ser una fruta climatérica, su rápida maduración genera pérdidas significativas, representando un desafío tanto para productores como para comercializadores, quienes buscan mantener la calidad del fruto desde la cosecha hasta el consumidor final (33. Galsurker O, Diskin S, Maurer D, Feygenberg O, Alkan N. Fruit stem-end rot. Horticulturae. 2018;4(4):50. Available from: https://doi.org/10.3390/horticulturae4040050 ).
Entre los principales problemas que afectan la comercialización del mango se encuentran las enfermedades por hongos, siendo la antracnosis la más relevante. Esta enfermedad, causada principalmente por hongos fitopatógenos, inicia con pequeñas manchas oscuras que se expanden rápidamente a medida que el fruto madura, afectando tanto la apariencia externa como la pulpa interna (44. Ardila CEC, Ramirez LA, Ortiz FAP. Spectral analysis for the early detection of anthracnose in fruits of Sugar Mango (Mangifera indica). Comput Electron Agric. 2020;173:105357. Available from: https://doi.org/10.1016/j.compag.2020.105357 ,55. Dofuor AK, Quartey NK-A, Osabutey AF, Antwi-Agyakwa AK, Asante K, Boateng BO, et al. Mango anthracnose disease: the current situation and direction for future research. Front Microbiol. 2023;14:1168203. Available from: https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1168203 ). Las pérdidas económicas asociadas son considerables, especialmente en el periodo postcosecha, cuando factores como la humedad y la temperatura favorecen la proliferación del patógeno (66. Zakaria L. Diversity of Colletotrichum species associated with anthracnose disease in tropical fruit crops: A review. Agriculture. 2021;11(4):297. Available from: https://doi.org/10.3390/agriculture11040297 ).
Históricamente, el control de la antracnosis ha dependido casi exclusivamente de fungicidas sintéticos (77. Nandeesha C V, Akbari LF, Jaiswal A, Harsha BR, Patil B, Bhaliya CM, et al. Control efficacy and yield response of different fungicides evaluated against anthracnose of green gram. Crop Prot. 2023;174:106432. Available from: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2023.106432 ). Aunque efectivos a corto plazo, su aplicación intensiva ha provocado la aparición de cepas resistentes, impactos negativos sobre el medio ambiente y la presencia de residuos químicos en los frutos (88. Boersma SJ, Depuydt DJ, Vyn RJ, Gillard CL. Fungicide efficacy for control of anthracnose of dry bean in Ontario. Crop Prot. 2020;127:104979. Available from: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2019.104979 ). En la actualidad, las normativas internacionales de seguridad alimentaria son cada vez más estrictas, limitando el acceso a mercados premium para productos que exceden los límites máximos de residuos (99. Lengai GMW, Fulano AM, Muthomi JW. Improving access to export market for fresh vegetables through reduction of phytosanitary and pesticide residue constraints. Sustainability. 2022;14(13):8183. Available from: https://doi.org/10.3390/su14138183 ).
Frente a esta situación, el control biológico ha surgido como una alternativa eficiente y sostenible, esta estrategia utiliza microorganismos benéficos capaces de reducir la población de patógenos y proteger al fruto sin afectar al ecosistema (1010. Rodríguez JHV, Sarango Y, Aveiga M del RV, Mata JDO, Sevilla-Carrasco JD, Cuesta JMD, et al. Effect of herbicides on the growth of beneficial microorganisms in rhizospheric soil. Revista La Facultad de Agronomía La Univ Del Zulia. 2025;42(2). Available from: https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v42.n2.VI ). Entre los microorganismos más estudiados para el biocontrol, se encuentra Trichoderma harzianum, el cual actúa mediante micoparasitismo, competencia por nutrientes y espacio, y producción de enzimas hidrolíticas como quitinasas y glucanasas que degradan la pared celular de los hongos fitopatógenos (1111. Jeres-Caguana GA, Montaño-Roldan VL, Ordoñez-Zuñiga NL, Vera-Rodriguez JH, Lucas-Vidal LR. Efecto biorremediador de la espirulina y Trichoderma spp. en suelo contaminado con plomo (Pb). Multidiscip Collab J. 2025;3(2):1-12. Available from: https://doi.org/10.70881/mcj/v3/n2/48 ). Tiene la capacidad de adaptarse a distintos ambientes y crecer rápido lo que lo hace un buen candidato para el control de antracnosis en frutos (1212. Carpio M, Vera J, Yugsan F, Gavin C, Barzallo D. Biofertilizer enriched with Paenibacillus polymyxa and Trichoderma sp. for radish cultivation. Revista Caatinga. 2025;38:e13759-e13759. Available from: https://doi.org/10.1590/1983-21252025v3813759rc ).
Por otro lado, las bacterias del género Pseudomonas, especialmente Pseudomonas fluorescens, son un bacilo Gram-negativo perteneciente a la familia Pseudomonadaceae, han demostrado ser excelentes agentes de bioprotección. Estas bacterias son famosas por poder convivir en los tejidos de las plantas y producir metabolitos secundarios con función antifúngica, como los sideróforos y antibióticos (1313. Jisha MS, Linu MS, Sreekumar J. Induction of systemic resistance in chilli (Capsicum annuum L.) by Pseudomonas aeruginosa against anthracnose pathogen Colletotrichum capsici. J Trop Agric. 2018;56(2). Available from: https://jtropag.kau.in/index.php/ojs2/article/view/586 ). Además, P. fluorescens puede generar defensa sistémica en el fruto, haciendo más fuertes sus defensas normales contra la llegada de patógenos, lo cual ayuda mucho a la acción de otros elementos biológicos (1414. Lahkar J, Goswami D, Deka S, Ahmed G. Novel approaches for application of biosurfactant produced by Pseudomonas aeruginosa for biocontrol of Colletotrichum capsici responsible for anthracnose disease in chilli. Eur J plant Pathol. 2018;150(1):57-71. Available from: https://doi.org/10.1007/s10658-017-1252-3 ). El estudio se basa en evaluar el efecto de Trichoderma harzianum y Pseudomonas fluorescens en el control de la antracnosis en frutos de mango en postcosecha.
Materiales y Métodos
⌅Área de estudio
⌅Para el estudio fueron considerados frutos de mangos de la finca experimental de la Universidad Agraria del Ecuador extensión Palestina de la provincia del Guayas - Ecuador, ubicada dentro de las coordenadas 1°37'03.1"S 79°58'31.6"W, a una altitud de 10 msnm. Este sitio es caracterizado por un clima tropical muy cálido y húmedo con temperaturas promedio entre 23 y 25 °C, con suelos arcillosos y de topografía plana. Los árboles de mango tienen 5 años de edad aproximadamente, bajo un manejo orgánico del cultivo.
Material genético
⌅El estudio utilizó frutos de mango del cultivar Tommy Atkins, seleccionados por su relevancia comercial y características de calidad. Los frutos seleccionados en promedio tuvieron 7,5 °Bx
Obtención de microorganismos y patógeno
⌅Los microorganismos benéficos fueron adquiridos en el laboratorio ecuatoriano especializado en microbiología agrícola (Microbiolab) en presentación liquida activados con metabolitos, esporas y clamidosporas. Para la identificación de la especie de antracnosis se envió un fruto con los síntomas de la enfermedad al laboratorio de identificación molecular de la ciudad de Quito IDgen para su respectivo aislamiento e identificación molecular de la especie.
Diseño experimental
⌅Para el experimento se usó un diseño completamente al azar (DCA), con seis tratamientos y diez repeticiones, cada unidad experimental comprendió un árbol de mango (Tabla 1).
| Simbología | Tratamiento | Concentración (UFC/mL) |
|---|---|---|
| T0 | Sin microorganismos | Control |
| T1 | P. fluorescens | 1×10⁷ |
| T2 | P. fluorescens | 1×10⁸ |
| T3 | T. harzianum | 1×10⁷ |
| T4 | T. harzianum | 1×10⁸ |
| T5 | P. fluorescens + T. harzianum | 1×10⁷ |
UFC: Unidad Formadora de colonias
Aplicación de tratamientos
⌅Los tratamientos se aplicaron por aspersión utilizando una bomba fumigadora de motor, iniciando en la temporada de floración y continuando hasta que la fruta comenzó a pintonear (aproximadamente 4 meses), con una frecuencia de aplicación cada 20 días.
Selección y almacenamiento de frutos
⌅De cada repetición de tratamiento fueron seleccionados cuatro frutos de mango, los mismos que se almacenaron bajo condiciones controladas de temperatura y humedad relativa (10 °C; 85 %), manteniéndolos en oscuridad durante 24 h de oscuridad; para un total de 240 frutos evaluados.
Evaluación de incidencia y severidad
⌅Las observaciones se realizaron a los cuatro días posteriores al almacenamiento, evaluando el porcentaje de frutos con síntomas visibles de antracnosis. La apariencia externa del mango se evaluó de manera visual, la incidencia se calculó dividiendo el número de frutos afectados entre el total evaluado y multiplicado por 100.
La severidad de antracnosis al cortar tajadas al fruto se determinó mediante una escala visual, en el porcentaje de área afectada por la enfermedad en carnosidad del fruto.
Medición de calidad del fruto
⌅Los grados Brix se midieron con un refractómetro manual, colocando unas gotas de jugo de mango triturado y filtrado en el prisma del equipo.
Análisis estadístico
⌅Los datos obtenidos fueron sometidos a Análisis de Varianza (ANOVA) y la prueba de comparación de medias de Tukey (α = 0,05) utilizando el software estadístico SAS® versión 9.4 (2015).
Resultados y Discusión
⌅Los resultados del análisis molecular de los microorganismos empleados en este estudio, presentados en la Tabla 2, confirmaron de manera precisa la identidad de los agentes de biocontrol T. harzianum y P. fluorescens, así como del patógeno C. gloeosporioides.
| Organismo | Gen | Longitud | Identidad | Accesión | Cobertura | E-value |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Trichoderma harzianum | ITS | 350 pb | 100 % | KF624792 | 100 % | 8e-162 |
| Pseudomona fluorescens | 16S | 1.198 pb | 100 % | MG977684 | 100 % | 0,0 |
| Colletotrichum gloeosporioides | ITS | 560 pb | 98 % | MH700455 | 97 % | 0,0 |
ITS (Espaciador Transcrito Interno), 16S (gen del ARN ribosomal 16S), pb (pares de base). Accesiones corresponden a la especie con mayor similitud al comparar con la base de datos GenBank con la ayuda de Blast.
La caracterización molecular confirmó la identidad de las especies de microorganismos benéficos con exactitud para P. fluorescens y T. harzianum, y un 98 % para el patógeno C. gloeosporioides. Esta exactitud es clave, pues usar fragmentos de genes como el gen 16S en bacterias e ITS en hongos es una forma de comparar la similitud genética entre estas especies de microrganismos. Según algunos autores, la correcta identificación de las especies permite predecir con mayor certeza la efectividad de los microorganismos benéficos frente a patógenos específicos, asegurando la validez de los ensayos de biocontrol (1515. Vera-Rodríguez JH, del Rocío Villamar-Aveiga M, Herrera-Feijoo RJ, Sevilla-Carrasco JD, Moreno D, Gavin-Moyano CS, et al. Detection of Diaporthe sp. in cacao plants (cv. CCN 51) in Guayas Province, Ecuador. Revista LA Fac Agron LA Univ DEL ZULIA. 2025;42(4). Available from: https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v42.n4.III ).
Durante la evaluación pos cosecha, se observó la apariencia externa de los frutos al momento de la cosecha y los cambios presentados durante los primeros cuatro días, así como la condición interna de la pulpa. Estos análisis permitieron identificar la presencia de síntomas de antracnosis y evaluar la integridad del tejido en los distintos tratamientos aplicados. La apariencia de los frutos bajo las diferentes condiciones experimentales se muestra en la Figura 1.
Durante la pos cosecha, el único tratamiento que presentó afectación por antracnosis fue el T0 (Control, sin microorganismos). En varias repeticiones de este tratamiento (R1, R2, R3 y R7) se observaron lesiones necróticas marrones y negras que se extendieron desde la piel hacia la pulpa, síntomas típicos de C. gloeosporioides, los cuales podrían comprometer la calidad comercial y la vida útil de los frutos. La descripción de estas afecciones internas se ilustra en la Figura 2, donde se evidencian claramente los daños en los frutos del control.
El análisis de incidencia mostró que solo los frutos del tratamiento T0 presentaron síntomas de antracnosis, alcanzando un 10 % de incidencia, mientras que los frutos de los demás tratamientos con microorganismos benéficos no mostraron presencia de la enfermedad (Tabla 3). Estos resultados confirman la eficacia de T. harzianum y P. fluorescens para el control de hongos fitopatógenos en mango durante la pos cosecha.
| Tratamiento | Nº de frutos totales | Frutos con síntomas | Incidencia (%) |
|---|---|---|---|
| T0 | 40 | 4 | 10 |
| T1 | 40 | 0 | 0 |
| T2 | 40 | 0 | 0 |
| T3 | 40 | 0 | 0 |
| T4 | 40 | 0 | 0 |
| T5 | 40 | 0 | 0 |
T0 (Control, sin microorganismos), T1 (P. fluorescens 1×10⁷ UFC/mL), T2 (P. fluorescens 1×10⁸ UFC/mL), T3 (T. harzianum 1×10⁷ UFC/mL), T4 (T. harzianum 1×10⁸ UFC/mL), T5 (P. fluorescens + T. harzianum 1×10⁷ UFC/mL)
En contraste, los frutos del tratamiento T0 (control) mostraron lesiones necróticas típicas de C. gloeosporioides, que se extienden desde la epidermis hacia la pulpa, reflejando la acción del patógeno, el cual permanece latente en los tejidos hasta que la fruta madura. Según Niebles (1616. Niebles JS, Escobar JP, Centeno KV, Cotrina DC, Gómez RM, Abanto RL, et al. Control de Colletotrichum “agente causal de la antracnosis en el fruto del mango (Mangifera indica L.)” aplicando metabolitos de Trichoderma. Revista Ciencias Biológicas y Ambient. 2022;1(1). Available from: https://doi.org/10.33326/29585309.2022.1.1597 ), el hongo filamentoso Trichoderma forma una capa protectora sobre el fruto y produce metabolitos antifúngicos, actuando como una barrera biológica que inhibe la reproducción de las esporas del patógeno, lo que explica la ausencia de síntomas en los frutos tratados.
Por su parte, el tratamiento con P. fluorescens mostró una notable reducción de la severidad externa e interna, actuando a través de la competencia por nutrientes y la producción de sideróforos. Incluso a concentraciones de 1×10⁷ UFC mL, la bacteria logró limitar el avance del hongo. Tal como dicen algunos investigadores, las bacterias Pseudomonas pueden hacer que el fruto tenga más resistencia sistémica, haciendo más fuertes las paredes de las células y frenando que las hifas del patógeno se extiendan hacia la pulpa (1717. Jiménez FAN, Ortiz ÁMM. Alternativas para el control de antracnosis (Colletotrichum spp) en maracuyá (Passiflora edulis). Revista Sist Prod Agroecol. 2018;9(2):2-17. Available from: https://revistas.unillanos.edu.co/index.php/sistemasagroecologicos/article/view/714 ), lo cual explica por qué los tratamientos T1 y T2 mantuvieron bien el mango por dentro durante los cuatro días después de la cosecha.
Además, se evaluó la concentración de sólidos solubles (Grados Brix) de la pulpa, evidenciando que el consorcio de P. fluorescens + T. harzianum (T5) alcanzó el valor más alto (15 °Brix), mientras que los tratamientos con cepas individuales de microorganismos también mostraron incrementos respecto al control (10 °Brix) (Tabla 4).
| Tratamiento | Grados Brix |
|---|---|
| T0 | 10d |
| T1 | 14ab |
| T2 | 13b |
| T3 | 13b |
| T4 | 12c |
| T5 | 15ª |
| E.E. | 0,84 |
| S2 | 4,27 |
T0 (Control, sin microorganismos), T1 (P. fluorescens 1×10⁷ UFC/mL), T2 (P. fluorescens 1×10⁸ UFC/mL), T3 (T. harzianum 1×10⁷ UFC/mL), T4 (T. harzianum 1×10⁸ UFC/mL), T5 (P. fluorescens + T. harzianum 1×10⁷ UFC/mL). E.E. (Error estándar), S2 (Varianza)
Este aumento de sólidos solubles sugiere que la interacción entre ambos microorganismos no solo protege al fruto frente a la antracnosis, sino que también mejora su calidad organoléptica y el metabolismo de carbohidratos, favoreciendo la conversión de almidones en azúcares simples durante la maduración. Como dice Schubert (1818. Schubert R, Werner S, Cirka H, Rödel P, Tandron Moya Y, Mock H-P, et al. Effects of arbuscular mycorrhization on fruit quality in industrialized tomato production. Int J Mol Sci. 2020;21(19):7029. Available from: https://doi.org/10.3390/ijms21197029 ), usar consorcios microbianos puede hacer que se activen procesos enzimáticos que hacen más rápida la conversión de almidones en azúcares simples, lo que podría estar mejorando el perfil comercial del mango y que se acepte más en el mercado.
Conclusiones
⌅El empleo de los microorganismos de control biológico T. harzianum y P. fluorescens, ya sea como cepas puras individuales o su consorcio, asegura los mecanismos de defensa del árbol de mango contra la antracnosis de la especie (C. gloeosporioides), contribuyendo una protección en el fruto incluso después de la cosecha, a diferencia de las plantaciones consideradas como testigo.
El uso del consorcio microbiano (T5) T. harzianum + P. fluorescens, no solo afirma el estado de salud de las plantas a través del fruto, sino que mejora su calidad incluso de las ventas al aumentar la concentración de sólidos solubles (15 °Brix), mostrando un mayor alargue de la vida útil del fruto de mango y del cultivo.